Значение возбудимости: Физиология возбудимых тканей

Содержание

Теоретическая основа способа измерения прямой мышечной возбудимости (экспериментальное исследование) | Бабинков

1. Кузин М. И., Бабинков В. И. Оценка повреждения мышц конечности при экспериментальном СДР у кролика с помощью метода прямой мышечной возбудимости. Актуальные вопросы военной травматологии. 1979; 7: 7–12.

2. Кузин М. И., Бабинков В. И., Светухин А. М. и др. Способ определения некроза тканей скелетных мышц. А.С. № 1113088. Приоритет от 15.07.1981.

3. Бабинков В. И. Способ определения поражения мышечной ткани голени и стопы. Положительное решение по заявке 5000/46(063854). Приоритет от 19.07.91

4. Бабинков В. И., Зюзин А. С. Прибор для диагностики степени поражения мышечной ткани голени и стопы. Российский генеральный регистр. Код: 1967.61А61НТ. 1993. Сертификат изобретения.

5. Жуков Е. К. Очерки по нервномышечной физиологии. Л.: Наука, 1969

6. Камкин А. Г., И. С. Киселева. Физиология и молекулярная биология мембран клеток. М.: Академия, 2008.

7. Urry D. W. A Molecular Theory of IonConducting Channels; Field-Dependent Transition between Conducting and Nonconducting Conformations. Proc. Nat. Academe. Sci. USA, 69, 1610 (1972).

8. Физическая и коллоидная химия. Лабораторный практикум. Под ред. С. Л. Белопухова. М.: Проспект, 2016.

9. Андреев В. С. Кондуктометрические методы и приборы в биологии и медицине. М.: Медицина, 1973

10. Ремпель А. А., Валеева А. А. Материалы и методы нанотехнологий.Екатеринбург, 2015. 136 с.

11. Roth B. L. The Electrical Conductivity of Tissue. The Biomedical Engineering Handbook. Second Edition Ed. Joseph D. Bronzino Boca Raton CRC Press, LC, 2000.

12. Sanchez B. et al. Guidelines to electrode positioning for human and animal electrical impedance myography research.

13. Бабинков В. И., Федоров Э. З., Саруханян О. О. Диагностика повреждения мышц при синдроме длительного раздавливания методом импедансографии скелетных мышц (ИГСМ). Синдром длительного раздавливания. М.: Воениздат, 1998. С. 110–112.

14. Гостищев В. К., Муляев Л. Ф., Бабинков В. И. и др. Стимуляционная импедансная миография – объективный метод диагностики жизнеспособности мышц у больных сахарным диабетом. Раны и раневые инфекции. Тезисы докладов Международного симпозиума. М., 193. С. 333–334.

Клиническое значение содержания микроэлементов у новорожденных, перенесших перинатальную асфиксию | Гасанов

1. Барашнев Ю.И. Перинатальная неврология. М.: ТриадаХ, 2011; 640.

2. Клименко Т.М., Тарасов И.В. Перинатальное гипоксическое поражение ЦНС: современный взгляд на проблему. Вопросы практической педиатрии 2013; 1(4): 40–45.

3. Amritanshy K., Smiris S., Kumor V. Clinical profile and shortterns outcome of hypoxic-ishemice ensefalopathy among birth asphyxiated babies in Kathior Medical Hospital. J Clin Neonatal 2014; 3(4): 195–199.

4. Брыксина Е.Ю., Брыксин В.С., Буштырева И.О. Патогенетические аспекты перинатального поражения центральной нервной системы и особенности неврологического статуса недоношенных детей. Современные проблемы науки образования 2015; 4: 410.

5. Володин Н.Н., Медведев М.Н., Горбунов А.В. Ранняя диагностика неблагоприятных последствий перинатальных гипоксически-ишемических поражений головного мозга у недоношенных детей и оптимизация их лечения. Педиатрия. Журнал имени Г.Н. Сперанского 2010; 19(2): 101–107.

6. American Academy of Pediatrics, Council on children with Disabilities; Section of Developmental Behavioral Pediatrics. Identifying infants and young children with developmental disorders in the medical home: an algorithm for developmental surveillance and screening. Pediatrics 2006; 118: 405–420. DOI: 10.1542/peds.2006-1231

7. Adebami O.J. Maternal and fetal determinants of mortality in babies with birth asphyxia. Gio Ady Res Med Sci 2015; 4(6): 270–276.

8. Basu P., Som S., Das H., Choudhuri N. Electrolyte status in birth asphyxia. Indian J Pediatr 2010; 77(5): 259–262. DOI: 10.1007/s12098-010-0034-0

9. Babu A.B., Davi S.S., Kumar K.B. Birth asphyxia Incidence and immediate outcome in relation to risk factor and complatous. Int J Res Hith 2014; 4: 1064–1071.

15. Психогенные заболевания, психотерапия — кафедра психиатрии и наркологии 1СПбГМУ им. И.П. Павлова

во время зачета Вам будет предложено 3 вопроса из этой темы

11

В
формировании
психической
травмы имеет
значение

+
тяжесть психотравмирующего
фактора

+
слабость механизмов
психологической
защиты

+
личностные
особенности

+
эмоциональная
значимость
психотравмирующего
фактора


снижение интеллекта


бредовое настроение

12

Что
из перечисленного
является ведущим
в терапии неврозов?


нейролептики


транквилизаторы


антидепрессанты

+
психотерапия

13

К
критериям
психогенных
расстройств
относятся
следующие
положения

+
содержание
психоза находится
в понятной
связи с психотравмирующими
переживаниями

+
психотравма
непосредственно
предшествует
развитию психоза

+
с прекращением
действия психической
травмы симптомы
редуцируются


чем острее
психическая
травма,тем
тяжелее исход

14

Гиперкинетическая
форма реактивного
психоза характеризуется


правильным
осмышлением
ситуации

+
хаотическим
психомоторным
возбуждением

+
нарушением
ориентировки
в окружающем


все перечисленное
неверно

15

Для
гипокинетической
формы реактивного
психоза характерно

+
состояние
резкой двигательной
заторможенности

+
нарушение
сознания


депрессивная
окраска переживаний


все перечисленное
неверно

16

Особенностью
клинической
картины реактивных
депрессия
является:


суточные колебания
настроения

+
триада Ясперса


выраженные
соматические
признаки депрессии


верно все
перечисленное

18

Неврозы
являются

+
психическим
расстройством
непсихотического
уровня


психическим
расстройством
психотического
уровня

+
болезнью с
обязательным
присутствием
астенического
синдрома


ничем из перечисленного

19

Для
неврастении
характерны

+
гиперстеническая
астения

+
гипостеническая
астения

+
вегетативные
расстройства


дисфории

+
нарушения сна


выраженные
депрессивные
переживания

20

Для
нервной анорексии
свойственны

+
стойкие отказы
от пищи


течение болезни
без потери
массы тела

+
сочетание с
приступами
булимии


все перечисленное
неверно

21

Невротические
вегетативные
кризы характеризуются

+
связанностью
с эмоциональным
напряжением

+
отсутствием
стереотипности
проявлений

+
разной длительностью
состояний


развитием под
действием
слуховых
псевдогаллюцинаций

22

Невроз
навязчивых
состояний
проявляется

+
развитием фобий


бредом ипохондрического
содержания

+
астеническими
расстройствами

+
ритуалами


ничем из перечисленного

23

Для
развития
истерического
невроза имеют
значение

+
личностный
склад художественного
типа

+
акцентуация
демонстративного
типа

+
тип ключевого
конфликта —
чрезмерная
завышенность
претензий
(«хочу, но не
дают»)


тип ключевого
конфликта —
завышенные
требования
к себе без учета
своих возможностей
(«хочу, но не
могу»)

24

В
судебно-психиатрической
экспертизе
неврозов следует
иметь в виду,
что

+
неврозы не
обусловливают
криминального
поведения

+
больные неврозами
могут отдавать
себе отчет в
своих действиях,
руководить
ими

+
неврозы, формируясь
как реакции
на ситуацию
следствия и
суда, могут
развиваться
после правонарушения


неврозы не
возникают у
преступников

25

Воспитание
в условиях
повышенной
тревожности,
чрезмерной
ответственности,
подавления
естественной
детской живости
и непосредственности
способствует
развитию


невротической
астении


невротической
депрессии

+
невротических
навязчивостей

26

При
гипоопеке чаще
формируются


псевдошизоидные
черты характера

+
повышенная
аффективная
возбудимость


психастенические
черты характера

27

Для
развития невроза
первостепенное
значение имеет


хроническое
соматическое
заболевание

+
внутриличностный
конфликт


слабость иммунной
системы


органическая
неполноценность
мозга

30

К
компульсивным
действиям
относятся


кататонические
расстройства

+
ритуалы


привычки


тики у детей

31

Примером
реактивных
(психогенных)
параноидов
могут быть

+
психозы при
уродствах лица


инфекционный
делирий

+
индуцированные
реактивные
параноиды


онейроидное
помрачение
сознания

32

К
истерическим
реактивным
психозам относятся

+
истерические
сумеречные
помрачения
сознания

+
псевдодеменция

+
пуэрилизм


реактивный
параноид

33

К
невротическим
синдромам
относятся все
перечисленные,
кроме


фобического


астенического

+
психоорганического
синдрома


обсессивного

34

К
этиологическим
факторам неврозов
относятся

+
преморбидные
особенности
личности

+
психические
травмы детского
возраста

+
события, порождающие
неопределенность
положения,
представляющие
угрозу для
будущего или
требующие
принятия трудных
альтернативных
решений


родовая травма

35

К
этиологическим
факторам
невротических
состояний
относят

+
некоторые
особенности
воспитания
и семейного
положения

+
факторы, связанные
с профессией
и трудовой
деятельностью

+
особенности
родительской
семьи


частые черепно-мозговые
травмы в анамнезе

36

Невротическая
ипохондрия
проявляется
всем перечисленным,
кроме


чрезмерной
заботы и беспокойства
о своем здоровье


переживания
неприятных
ощущений в
организме

+
наличия характера
сделанности
неприятных
ощущений


эмоциональных
нарушений


тревожной
мнительности

38

К
психогенным
сенсорным
нарушениям
и расстройствам
чувствительности
относятся

+
концентрическое
сужение поля
зрения

+
утрата слуха

+
анестезии


мутизм

39

Для
истерического
невроза свойственны

+
полиморфизм
симптоматики

+
расстройства
чувствительности

+
двигательные
расстройства


галлюцинаторные
расстройства

40

Истерические
припадки могут
характеризоваться
всем перечисленным,
кроме:


помрачения
сознания

+
послеприпадочного
оглушения


тонических
судорог


принятие страстных
поз и жестов


клонических
судорог

41

При
воспитании
по типу «кумир
семьи» чаще
формируется


повышенная
аффективная
возбудимость


психастенические
черты характера


псевдошизоидные
черты характера

+
истерические
черты характера

42

К
компульсивным
действиям
относятся


кататонические
расстройства

+
ритуалы


привычки


тики у детей

Индуктотермия

Индуктотермия

Мы заботимся о наших гостях и принимаем меры по борьбе с распространением вируса COVID-19.
Мы заботимся о безопасности наших гостей.
Подробнее


Индуктотермия — это метод электролечения, действующим фактором которого является высокочастотное переменное магнитное поле.

Действие энергии этого поля вызывает появление наведенных (индуктивных) вихревых токов, механическая энергия которых переходит в тепло. Расширяются сосуды, ускоряется кровоток, снижается артериальное давление, улучшается коронарное кровообращение.

С теплообразованием и усилением кровотока связано противовоспалительное и рассасывающее действие индуктотермии. Происходит также понижение тонуса мышц, что имеет значение при спазме гладкой мускулатуры. Понижение возбудимости нервных рецепторов обуславливает обезболивающее и седативное действие.

Применение этой процедуры на область надпочечников стимулирует их глюкокортикоидную функцию. При этом методе лечения наблюдается повышение содержания кальция в тканях, бактериостатическое действие.

Показания к применению

Показаниями к назначению индуктотермии являются подострые и хронические воспалительные заболевания внутренних органов, органов малого таза, ЛОР-органов, заболевания и травмы опорно-двигательного аппарата, периферической и центральной нервной системы.

Противопоказания

К числу частных противопоказаний относятся нарушения болевой и температурной чувствительности кожи, наличие металлических предметов в тканях в зоне воздействия и острые гнойные процессы.

врачу эндокринологу, доктору медицинских наук
Завражных Любови Аркадьевне



Натрий в сыворотке

Натрий – минеральный элемент, являющийся важной частью тканей тела человека. Это основной внеклеточный катион, поддерживающий осмотическое давление и регулирующий кислотно-основное состояние, нервно-мышечную возбудимость и передачу электрического импульса.

Синонимы русские

Ионы натрия, натрий в крови.

Синонимы английские

Sodium, Na, Sodium serum.

Метод исследования

Ионселективные электроды.

Единицы измерения

Ммоль/л (миллимоль на литр).

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Венозную кровь.

Как правильно подготовиться к исследованию?

  1. Не принимать пищу в течение 12 часов перед исследованием.
  2. Не курить в течение 30 минут до исследования.

Общая информация об исследовании

Натрий – жизненно важный микроэлемент, который необходим для передачи импульсов в нервной системе и мышечных сокращений. Ион натрия взаимодействует с другими электролитами (калием, хлором, карбонат-анионом) и регулирует водно-солевой баланс организма. Вместе они обеспечивают нормальную работу нервных окончаний – передачу слабых электрических импульсов и, как следствие, сокращение мышц.

Натрий присутствует во всех жидкостях и тканях организма, но в наибольшей концентрации – в крови и во внеклеточной жидкости. Уровень внеклеточного натрия контролируется почками.

Для людей источник натрия – столовая соль. Большинство получает суточную норму этого элемента.

На всасывание натрия в кишечнике оказывают влияние гастрин, секретин, холецистокинин, простагландины. Организм забирает часть поступившего натрия на свои нужды, а остальное почки выделяют, поддерживая концентрацию электролита в очень узком диапазоне.

Механизмы поддержания натрия:

  • производство гормонов, которые повышают или понижают потерю натрия с мочой (натрийуретический пептид и альдостерон),
  • производство гормона, предупреждающего потерю жидкости с мочой (антидиуретический гормон),
  • контроль жажды (антидиуретический гормон).

Выходящая за пределы нормы концентрация натрия в крови обычно связана с одним из перечисленных механизмов. При изменении уровня натрия в крови меняется и количество жидкости в тканях организма. Чаще всего это приводит к обезвоживанию или отечности (особенно ног).

Из всех электролитов натрия в человеческом организме больше всего. Он играет главную роль в распределении жидкости между внеклеточным и внутриклеточным пространствами. Кроме того, он участвует в передаче нервного импульса и сокращении сердечной мышцы. Без определенного количества натрия организм не способен функционировать, поэтому так важно, чтобы его уровень был стабилен и не подвергался значительным колебаниям.

Натрий выделяется почками, а его концентрация регулируется гормоном альдостероном, синтезирующимся в надпочечниках. Другими факторами, поддерживающими натрий на постоянном уровне, являются активность фермента карбоангидразы, действие гормонов из передней доли гипофиза, секреция фермента ренина, АДГ, вазопрессин.

Для чего используется исследование?

  • Для определения степени гипонатриемии и гипернатриемии, часто возникающей при дегидратации, отеках и других заболеваниях.
  • Для диагностики патологии головного мозга, легких, печени, сердца, почек, щитовидной железы, надпочечников, являющейся следствием или причиной дефицита или избытка натрия.
  • Для контроля за эффективностью лечения пациентов с нарушением состава электролитов, например при приеме диуретиков.

Когда назначается исследование?

  • При стандартном лабораторном обследовании в рамках биохимического анализа крови у большинства людей (вместе с группой других электролитов: хлором, калием, магнием).
  • При неспецифических жалобах для контроля результатов лечения артериальной гипертензии, сердечной недостаточности, заболеваний почек и/или печени.
  • При подозрении на обезвоживание.
  • При симптомах гипонатриемии (слабости, вялости, спутанности сознания) и гипернатриемии (жажде, снижении количества выделяемой мочи, судорогах, возбуждении).

При резком падении уровня натрия человек может почувствовать слабость и утомляемость, в некоторых случаях возникает спутанность сознания вплоть до коматозного состояния. При более медленном снижении концентрации натрия симптомов может вообще не быть, поэтому его уровень все равно проверяют даже при отсутствии симптомов.

Что означают результаты?

Референсные значения: 136 — 145 ммоль/л.

Пониженный уровень натрия говорит о гипонатриемии, возникающей из-за чрезмерной потери электролита, избыточном поступлении жидкости в организм или ее задержке с отеками или без них.

Гипонатриемия редко возникает при недостатке поступления электролита извне. Наиболее часто она является следствием его возросшей потери (из-за болезни Аддисона, диареи, повышенного потоотделения, приема диуретиков или заболевания почек). Уровень натрия может снижаться в ответ на увеличение общего объема жидкости в организме (при чрезмерном потреблении воды, сердечной недостаточности, циррозе, заболеваниях почек, вызывающих чрезмерную потерю белка с мочой, например нефротическом синдроме). Иногда (особенно при заболеваниях головного мозга и легких, многих раковых поражениях и при употреблении некоторых лекарств) организм продуцирует много антидиуретического гормона, задерживающего жидкость в теле.

Высокий уровень натрия подразумевает гипернатриемию, в большинстве случаев возникающую из-за обезвоживания при недостаточном поступлении жидкости. Среди ее симптомов сухость слизистых, жажда, беспокойство, беспорядочные движения, судороги и кома. В редких случаях гипернатриемию вызывает синдром Кушинга или состояние с низким уровнем АДГ (несахарный диабет).

Причинами высокого уровня натрия могут быть кетоацидоз, синдром Кушинга, дегидратация, заболевание почек, несахарный диабет, большое поступление натрия, гиперальдостеронизм и др, низкого – постоянная жажда, сердечная недостаточность, рвота, диарея, несахарный диабет, цирроз, заболевания почек.

Снижение уровня натрия свидетельствует чаще о переизбытке жидкости, чем о нехватке натрия. Оно может быть вызвано:

  • застойной сердечной недостаточностью (отеками нижних конечностей и скоплением жидкости в естественных полостях организма),
  • чрезмерной потерей жидкости (тяжелой диареей, рвотой, сильным потоотделением),
  • введением гипертонического раствора глюкозы (накоплением жидкости в кровяном русле для разбавления получившегося состава крови),
  • тяжелым нефритом,
  • непроходимостью пилорического отдела желудка (рвотой желудочным содержимым с высоким содержанием электролитов),
  • мальабсорбцией – нарушением первичного всасывания натрия, поступающего с пищей, и адсорбцией натрия, выделившегося в просвет ЖКТ,
  • диабетическим ацидозом,
  • передозировкой лекарственных препаратов, например диуретиков (повышенным выделением электролита с мочой),
  • отеками,
  • большим поступлением жидкости,
  • гипотиреозом,
  • повышенной выработкой АДГ (задержкой жидкости в организме),
  • надпочечниковой недостаточностью (нехваткой альдостерона, отвечающего за обратное всасывание натрия в почках),
  • ожоговой болезнью (разбавлением крови за счет межклеточной жидкости).

Уровень натрия повышается при следующих состояниях:

  • обезвоживание,
  • синдром и болезнь Кушинга (чрезмерная выработка кортикостероидов, повышающих содержание натрия в организме),
  • первичный и вторичный гиперальдостеронизм,
  • кома,
  • несахарный диабет (недостаток выработки антидиуретического гормона),
  • трахеобронхит.

Что может влиять на результат?

  • Недавно полученная травма, хирургическое вмешательство, шоковое состояние способствуют увеличению концентрации натрия.
  • На уровень натрия влияют многие лекарства. Повышают его анаболические стероиды, кортикостероиды, кальций, соединения фтора, андроген, эстрогены, метилдопа, слабительные, оральные контрацептивы, бикарбонат натрия, понижают – гепарин, сульфаты, диуретики, карбамазепин, трициклические антидепрессанты.


Скачать пример результата

Важные замечания

Гипернатриемией нередко страдают младенцы, находящиеся на искусственном вскармливании, так как молочные смеси содержат намного больше натрия, чем материнское молоко. Из организма детей натрий выводится хуже, чем из организма взрослых, поэтому большое количество натрия в продуктах детского питания опасно для ребенка и может привести к обезвоживанию.

Также рекомендуется

Кто назначает исследование?

Терапевт, уролог, нефролог, инфекционист, эндокринолог, кардиолог, гастроэнтеролог, диетолог, травматолог, онколог, невролог.

Что делать, если у ребёнка повышенная раздражительность.

Повышенная возбудимость и раздражительность ребенка могут быть следствием многих причин, в том числе физиологических, связанных с незрелостью нервной системы, ее реакцией на различные негативные воздействия во время беременности (болезни мамы, курение, употребление алкоголя, физические и эмоциональные перегрузки), а также рождение раньше срока, с помощью кесарева сечения или в тяжелых естественных родах. Раздражительность может быть ответом на окружающую обстановку или завышенные требования к ребенку без учета возрастных и индивидуальных особенностей психики. 

До 3 лет любой повод – неправильное питание, громкие звуки, яркий свет, неудобная одежда, смена обстановки, проявление негативных эмоций взрослых — могут вызывать раздражение, плаксивость, проблемы со сном, быструю утомляемость ребенка. Что могут сделать родители?

— Постарайтесь как можно скорее устранить дискомфорт и успокоить ребенка.  Обеспечьте соблюдение режима дня, правильное питание, физические и психологические нагрузки, адекватные его возрасту и состоянию. Не пытайтесь воспитывать у маленького ребенка выдержку и выносливость, это только усугубит его дискомфорт и затруднит возвращение к эмоционально стабильному состоянию.

— Заранее подготавливайте ребенка к любым изменениям, рассказывайте и объясняйте, что будет происходить, смягчайте содержание неприятной информации. Например, расскажите, зачем нужно идти к врачу и почему это хорошо, когда и по какому поводу к вам придут гости, сколько времени ребенок проведет без вас (с бабушкой или няней), чем он будет заниматься в детском учреждении. Если пора заканчивать игру и идти спать, расскажите, что игрушки устали, выглядят сонными и предложите сначала уложить их спать, а потом лечь самому.

—  Сохраняйте спокойствие сами, не заражайтесь эмоциями ребенка. Пока родитель в спокойном состоянии, он способен повлиять на ситуацию и помочь ребенку справиться с эмоциями. Не показывайте свой испуг или разочарование, не пугайте ребенка предположениями о том, что могло бы случиться, и не утомляйте его нравоучениями.

Дошкольный возраст. Чем старше становится ребёнок, тем большее значение в развитии и закреплении раздражительности приобретают факторы воспитания, поэтому родителям следует обратить внимание на используемые стратегии воспитания и собственное поведение, которое ребенок может копировать.

— Показывайте пример конструктивного разрешения конфликтных ситуаций и уважительного отношения ко всем членам семьи. Не бойтесь извиниться, если были не правы или в запале сказали обидные слова. Учитесь переключать свое эмоциональное состояние, распознавать и предотвращать вспышки раздражения. Следите за своим психологическим здоровьем, не доводите себя до состояния истощения и «загнанности». 

— Если ваш ребенок тревожный и бурно реагирует на неудачи — предоставляйте ему больше самостоятельности в ситуациях, не угрожающих его здоровью, не окружайте его чрезмерной заботой. Ребенку важен опыт преодоления трудностей, это придает ему уверенность в своих силах. 

— В то же время требуйте уважительного отношения к старшим, соблюдения режима дня, правил вежливости и норм поведения в общественных местах. Иначе вседозволенность и полная свобода могут привести к частому раздражению и выражению недовольства даже при необходимых и обоснованных требованиях. 

— Разговаривайте с ребенком, объясняйте ребенку свою позицию. Будьте терпеливы и готовы уделять этому столько времени, сколько потребуется ребенку, чтобы понять вас и прийти к соответствующим выводам. Грубость, пренебрежение, угрозы, шантаж травмируют детскую психику и недопустимы в воспитании. 

— Предлагайте и разбирайте вместе возможные варианты поведения в ситуациях, вызывающих у ребенка раздражение, способы реагирования на неприятности. Поощряйте его рассуждения и вовлекайте в диалог, помогая ребенку научиться преодолевать трудности. Хвалите и поддерживайте, если не все получается. Например: «Ты молодец, что пытаешься сам справиться. Учиться всегда сложно, но ты скоро научишься этому».

У младших школьников переживания и раздражительность будут связаны еще и с высокой ответственностью, учебной нагрузкой, отношениями с одноклассниками и учителями, атмосферой в классе. Ваша задача в спокойной домашней обстановке помочь ребенку отреагировать на обиды, поддержать его и помочь переключить внимание.

— Обсуждайте с ребенком ситуации, вызывающие у него эмоциональный отклик. Осознание детьми собственных мыслей, эмоций и действий происходит с помощью взрослых. Поэтому, разбирая ситуацию, мы помогаем ребенку осознавать ее. Привычка держать в себе переживания может привести к нервному перенапряжению, повышенной тревожности, ночным страхам и даже к развитию соматических заболеваний.

— Не требуйте идеального выполнения заданий по всем предметам, это будет вызывать раздражение и нежелание что-либо делать еще до начала работы. Нормально, что к каким-то наукам дети более способны, одни предметы им даются легче, чем другие. Не давите и не ругайте ребенка, не сравнивайте с другими детьми или с собой в детстве.  

— Организуйте ребенку возможность отдыха, смены вида деятельности и общения с ровесниками за пределами школьного коллектива – в различных кружках, спортивных секциях, музыкальной школе, с друзьями по двору.

Повышенная раздражительность, агрессивность, нервозность — характерные особенности подросткового возраста. Их появление в первую очередь связано с гормональными перестройками, происходящими в организме. Нервная система не может быстро адаптироваться, подростки часто не осознают и не могут контролировать свои эмоции, чувствуют одиночество  из-за своей эмоциональной нестабильности. 

— Разговаривайте доброжелательно, интересуйтесь переживаниями подростка. Проявляйте больше внимания и любви к нему, просто за то, что он есть. Тогда подросток будет чувствовать себя более уверенно, у него будет повышаться самооценка. 

— Помогите подростку осознать причины своей раздражительности, развёрнуто проговаривая различные ситуации, чтобы научить подростка лучше понимать и контролировать своё психологическое состояние. 

— Подростки уже считают себя взрослыми и будут защищать свои права, если вы будете относиться к ним, как к детям. Объясните ему, что быть взрослым — это большая ответственность, что он должен уметь контролировать свои эмоции и отвечать за свои поступки. 

— Предоставьте подростку больше свободы при условии соблюдения ваших с ним договоренностей (звонки в определенное время, некоторые важные ограничения). Позвольте ему самостоятельно сказать, когда придет, что-то сделать самому и похвалите за результат, тогда возникает радость успеха и желание сделать и быть лучше.

— Не обвиняйте, а пытайтесь понять подростка — увидеть его проблемы, поставить себя на его место, вспомнить, какие у вас были переживания в этом возрасте. Ведь подросткам часто кажется, что их никто не понимает, что значимым людям безразличны их интересы и чувства. 

— Не акцентируйте внимание на недостатках, опирайтесь на положительные качества и помогайте увидеть ресурсы. Даже недовольство собой может стать стимулом к самосовершенствованию.

О чем расскажет оценка малыша по шкале Апгар?

Свою первую оценку малыш получает уже в родильном зале на первой минуте после рождения. Неонатологи оценивают базовые показатели состояния новорожденного – окраску кожного покрова, частоту сердечных сокращений, рефлекторную возбудимость, мышечный тонус и дыхание.

Еще спустя 5 минут (а при особой необходимости через 10) обследование повторяется. Таким образом специалисты получают информацию о том, насколько хорошо малыш адаптируется к новым условиям жизни, нужно ли ему особое медицинское внимание, и выясняют, не требуются ли срочные реанимационные действия.

Автором данной системы быстрой оценки состояния новорожденного – шкалы Апгар – является американская врач анестезиолог-реаниматолог Вирджиния Апгар. Метод был представлен почти 70 лет назад и до сих используется во всем мире.

Как выставляются баллы?

По каждому критерию ребенок может получить от 0 до 2 баллов. Финальная оценка складывается из суммы пяти показателей и может составить максимум 10 баллов.

На выходе врач получит две цифры, записанные через дробь: одна расскажет о состоянии малыша в первую минуту жизни, вторая – спустя пять минут.

2 балла могут быть выставлены, когда оцениваемый признак выражен ярко и соответствует норме, 1 – при слабой выраженности, 0 – если отсутствует.

Пример: малыш с сердцебиением более 100 ударов в минуту получит 2 балла, если показатель будет ниже сотни – 1; на «отлично» оценят новорожденного с розовым кожным покровом, а вот ребеночек с синюшными конечностями получит 1 балл; малыш, заявивший о себе громким криком, демонстрирующий стабильное дыхание, также сдаст свой экспресс-тест на высший балл, а ребенок «поскромнее» – с нерегулярным, поверхностным дыханием и слабым криком – 1.

Интерпретация результатов

Результат второй оценки состояния малыша обычно оказывается выше. Это значит, что новорожденный хорошо адаптируется к жизни в новых условиях. Как правило, показатели 7/8, 8/8, 8/9, 9/9, 9/10 или 10/10 говорят о том, что с ребенком все хорошо и волноваться не стоит.

Средний балл обычно составляет 7-8. Это значит, что малыш хорошо себя чувствует и не имеет явных патологических особенностей.

А если цифры чуть ниже – не переживайте и доверьтесь специалистам, а также помните, значения данных показателей актуальны прежде всего на момент рождения, главным образом для врачей и если требуют внимания, то в основном, в первый год жизни ребенка, однако в долгосрочной перспективе не влияют на крепость здоровья и иммунитет.

Фазовая диаграмма, построенная с помощью динамического зажима

для модели возбудимости Ходжкина и Хаксли

Значение

Давняя проблема в физиологии — устойчивость клеточных функций к изменениям концентраций и кинетики биомолекул. Считается, что устойчивость отражает функциональные отношения между многими лежащими в основе биологическими компонентами. Здесь мы изучаем взаимосвязь между параметрами натриевых и калиевых каналов и возбудимостью мембран. Мы использовали динамический зажим, систему с компьютерным управлением, которая, по сути, позволяет моделировать биологические клетки и ионные каналы.Мы установили замкнутый цикл взаимодействия в реальном времени между генетически контролируемой популяцией связанных с возбудимостью ионных каналов и низкоразмерным математическим описанием возбудимости. Результаты дают представление о том, насколько устойчивость возбудимости выигрывает от изменчивости зависящих от истории временных масштабов, отображаемых ионными каналами.

Abstract

Возбудимость — пороговый переходный процесс трансмембранного напряжения — это фундаментальный физиологический процесс, который контролирует работу сердца, эндокринной системы, мышц и нервных тканей.Явная формулировка Ходжкина и Хаксли 1950-х годов обеспечивает математическую основу для понимания возбудимости как следствия свойств потенциалзависимых натриевых и калиевых каналов. Модель Ходжкина-Хаксли более чувствительна к параметрическим изменениям плотности и кинетики белков, чем биологические системы, возбудимость которых, по-видимому, более устойчива. Обычно предполагается, что чувствительность модели отражает отсутствующие функциональные связи между ее параметрами или другими компонентами, присутствующими в биологических системах.Здесь мы экспериментально собрали возбудимые мембраны с использованием динамического зажима и потенциал-управляемых ионных каналов калия (Kv1.3), экспрессированных в ооцитах Xenopus . Мы используем теоретически полученную фазовую диаграмму, где явление возбудимости сводится к двум измерениям, определяемым как комбинации параметров модели Ходжкина – Хаксли, для изучения функциональных соотношений в пространстве параметров. Кроме того, мы демонстрируем зависимость активности и гистерезисную динамику на фазовой диаграмме из-за воздействия сложной кинетики медленной инактивации.Результаты показывают, что поддержание возбудимости при параметрических вариациях — это низкоразмерный, физиологически приемлемый процесс управления. В контексте построения модели результаты указывают на потенциально значительный разрыв между многомерными моделями, которые отражают полную меру сложности, отображаемой функцией ионного канала, и более низкой размерностью, которая отражает физиологическую функцию.

Каноническая модель возбудимости Ходжкина – Хаксли (1) состоит из четырех динамических переменных (мембранного напряжения и трех переменных состояния белка) и более чем 10 параметров.Некоторые из параметров представляют собой реальные, измеримые физические объекты (емкость мембраны, ионные концентрации внутри и вне клетки, а также плотности мембранных белков ионных каналов). Другие параметры формируют шесть экспоненциальных функций, связывающих мембранное напряжение с вероятностями переходов между состояниями белка (2 (– 4). Существенная чувствительность модели к параметрическим изменениям — особенно плотности и кинетике белков — не соответствует устойчивости многих биологических систем, как показали эксперименты, демонстрирующие высокую степень устойчивости к изменению значений измеряемых параметров (5⇓⇓– 8).Поскольку модель Ходжкина – Хаксли является биофизически прочной, обычно предполагается, что ее чувствительность отражает функциональную взаимосвязь между параметрами (7). Следовательно, низкоразмерное представление пространства параметров Ходжкина-Хаксли, внутри которого, казалось бы, сложная и чувствительная к параметрам система становится управляемой, поможет понять, как биологическая система может контролировать свое состояние и адаптироваться к изменениям с помощью простого и физиологически значимого процесса.

Недавно была представлена ​​биофизически ориентированная параметризация модели Ходжкина-Хаксли (4), предлагающая основу для понимания контроля возбудимости среди изменений плотности белков и их кинетики.На полученной фазовой диаграмме состояние возбудимости данной реализации Ходжкина-Хаксли определяется рациональными функциями, полностью определенными в терминах параметров Ходжкина-Хаксли по двум физиологическим измерениям: структурному и кинетическому. Структурный размер (обозначенный S) является мерой относительного вклада максимальной возбуждающей (т. Е. Натриевой) проводимости. Кинетический размер (обозначенный K) является мерой относительного вклада восстановления зависимых от напряжения функций скорости, которые возвращают мембрану к ее гиперполяризованному потенциалу (т.е.е., закрытие натриевых каналов и открытие калиевых каналов). Таким образом, точка на фазовой диаграмме S – K представляет множество различных возможных наборов параметров модели, явных экземпляров модели Ходжкина – Хаксли, которые приводят к аналогичному функциональному результату. Изученная в плоскости S – K, модель Ходжкина – Хаксли выявляет порядок, который невозможно обнаружить в многомерных представлениях. Три различных состояния возбудимости сгруппированы по фазам: невозбудимый, возбудимый и колеблющийся (изображены на рис.1, Левый ). Обратите внимание, что фазовая диаграмма S – K отличается от фазового пространства, где каждая точка изображает уникальное состояние мембраны данного экземпляра, а линии, соединяющие такие состояния, изображают фазовые портреты, траекторию во времени (например, ссылки 9⇓⇓ – 12 ).

Рис. 1.

Структурно-кинетическая (S – K) фазовая диаграмма состояния возбудимости в модели Ходжкина – Хаксли. ( Left ) Десять тысяч реализаций полной модели Ходжкина – Хаксли, следуя процедуре, описанной в Ori et al.ex изображают функции скорости перехода, вносящие вклад в восстанавливающие и возбуждающие силы: αn (V) и βm (V) для первого и αm (V) и βn (V) для последнего. Параметры (максимальная проводимость натрия и калия, проводимость утечки, емкость мембраны и шесть функций уравнения скорости) изменяются случайным образом и независимо в диапазоне ± 0,25 по сравнению с их значениями в исходной модели Ходжкина – Хаксли. Результирующие мембранные ответы на стимулы выше порога классифицируются (разные цвета) по трем состояниям возбудимости: возбудимый (2225; синий), невозбудимый (4884; оранжевый) и колебательный (2891; зеленый).( Правый ) Набор данных Левый с перерисовкой цветов, изображающих кластеры пиковой амплитуды ответа, классифицированные по четырем ячейкам, указанным на горизонтальной цветной полосе.

Настоящее исследование направлено на экспериментальное раскрытие фазовой диаграммы S – K с реальными биологическими компонентами, а не с математическим моделированием. Проблема заключается в следующем: по определению, ячейка в определенный момент времени является экземпляром одной точки на фазовой диаграмме S – K, одного набора параметров. Следовательно, невозможно систематически покрывать плоскость S – K данной биологической клетки (нейрона, сердечного миоцита и т. Д.).), манипулируя кинетическими и структурными особенностями его составляющих, белков ионных каналов. Сбор данных из множества отдельных клеток аналогичного типа не поможет, потому что похожие типы имеют тенденцию быть резидентами одной и той же фазы (например, сердечные миоциты в основном колеблются, а корковые нейроны в основном возбудимы, но не колеблются). Здесь мы сталкиваемся с проблемой систематической выборки S-K-фазовой диаграммы Ходжкина – Хаксли путем комбинирования установленной методологии гетерологичной экспрессии канальных белков в ооцитах Xenopus (13, 14) и динамического зажима в реальном времени (15⇓⇓– 18).С помощью этого подхода мы экспериментально реконструируем первый фазовый переход на S – K диаграмме: переход между невозбужденной и возбудимой фазами (изображен на рис. 1, Right ). Более того, мы показываем, что направленная «прогулка» в плоскости S – K демонстрирует гистерезис в организации фазовой диаграммы, который мы объясняем в терминах медленного и зависимого от активности стробирования, связанного с белком канала, что потенциально позволяет контролировать возбудимость при параметрических вариациях (3 , 4).

Результаты и обсуждение

Система экспрессии ооцитного белка Xenopus часто используется в физиологических исследованиях ионных каналов; С помощью этой простой и экспериментально элегантной системы было проведено несколько фундаментальных исследований взаимосвязей между структурой ионных каналов и функцией (например,г., исх. 19⇓ – 21). Для всех практических целей ооцит является идеальным электрофизиологическим призраком: это большой и сферический (т. Е. Изопотенциальный) излучающий конденсатор, он не выражает значительной чувствительной к напряжению мембранной проводимости и легко выражает функциональную проводимость после инъекции мРНК, кодирующей ионный канал. . Связывание гетерологичной экспрессии ооцитов Xenopus с динамическим зажимом позволяет разделить компоненты системы между теми, которые биологически экспрессируются в мембране ооцита, и теми, которые выражаются вычислительным способом в алгоритме динамического зажима.Рис. 2 A демонстрирует эффективность этого подхода в создании биосинтетической возбудимой системы: ооцит пронзают двумя острыми электродами. Сигналы с электрода для измерения напряжения считываются процессором в реальном времени, который вычисляет натриевые и калиевые токи Ходжкина-Хаксли, подавая сумму этих токов обратно в ооцит через электрод, подающий ток. Ооцит вносит вклад в емкость мембраны и проводимость утечки, линейные компоненты; алгоритм динамического ограничения вносит вклад в нелинейные компоненты проводимости натрия и калия, зависящие от напряжения.Характер отклика системы (Рис. 2 A , Bottom ) зависит от параметров Ходжкина – Хаксли, реализованных в алгоритме динамического ограничения.

Рис. 2.

Динамический зажим построил фазовую диаграмму возбудимости у наивных (т.е. без введения мРНК канала) Xenopus ооцита. ( A ) Эквивалентная электрическая схема базовой конфигурации системы ( Top и Middle ). Ооцит протыкают двумя острыми электродами. Сигналы с электрода для измерения напряжения считываются процессором в реальном времени, который вычисляет натриевые и калиевые токи Ходжкина-Хаксли, подавая сумму этих токов обратно в ооцит через электрод, подающий ток.m (V) = [0,75, 1,25]; см. Результаты и обсуждение для обозначений масштабирования). ( B ) Фазовые диаграммы S – K. Доступные для сканирования динамическим зажимом диапазоны S и K различаются между экспериментами; они продиктованы, в основном, утечкой и емкостью, вносимой ооцитом, и на которые влияет качество электродно-мембранного взаимодействия. В обоих экспериментах мягкие, но относительно четко определенные границы отделяют невозбудимые фазы от возбудимых (цвета обозначают кластеры пиковой амплитуды отклика, классифицированные по четырем ячейкам, указанным в горизонтальных цветных полосах).Диаграммы построены в различных условиях: в Top параметры натриевой и калиевой проводимости взяты из канонической модели Ходжкина – Хаксли. В Bottom параметры калиевой проводимости соответствуют параметрам канала Kv1.3 (22). Оба эксперимента проводились с одним и тем же ооцитом.

Следуя Ori et al. (4) структурный размер (S) определяется как ĜNa / (ĜNa + ĜK), где ĜX — максимальная проводимость мембраны по отношению к иону X, приведенная к значениям стандартной модели Ходжкина – Хаксли G¯X, где G¯Na = 120 мСм / см2 и G¯K = 36 мСм / см2.ex изображают функции скорости перехода, вносящие вклад в восстанавливающие и возбуждающие силы: αn (V) и βm (V) для первого и αm (V) и βn (V) для последнего. Как показано в Ori et al. m (V) ([0,10]; [0,2] соответственно) .м (В)). Состояние возбудимости ооцита для каждого экземпляра значения S – K определяли по его ответу на одиночный стимул с постоянной амплитудой тока (0,5 мс; Methods ). Полученные фазовые диаграммы двух экспериментов представлены на рис. 2 B . Подобно теоретической фазовой диаграмме на рис. 1, справа , график на рис. 2 B показывает хорошо структурированные плоскости S – K с мягкими, но относительно четко очерченными границами, которые отделяют невозбудимые фазы от возбудимых (цвета изображают реакцию кластеры амплитуд, классифицированные по четырем ячейкам, обозначенным горизонтальными цветными полосами).На рис. 2 B , Top параметры натриевой и калиевой проводимости взяты из канонической модели Ходжкина – Хаксли. На рис. 2 B , Bottom параметры калиевой проводимости соответствуют параметрам канала Kv1.3 (22⇓ – 24).

Чтобы подтвердить редукцию до S – K-пространства, мы продвинули описанную выше экспериментальную систему на шаг дальше, переместив зависимую от напряжения проводимость калия из алгоритма динамического ограничения в биологическую область (рис.3 А ). Это достигается путем инъекции мРНК, которая кодирует потенциал-зависимый калиевый канал Kv1.3 (25). В течение нескольких дней каналы широко экспрессируются в мембране ооцита. Как показано на рис. 3 A , Bottom , при активации динамического зажима возбудимость возникает с биологической емкостью, утечкой и проводимостью калия, в то время как проводимость натрия и связанная с ней кинетика выражаются в расчетах. (Наши попытки реализовать обратное экспериментальное условие, при котором проводимость натрия выражается биологически, не увенчались успехом; выражение проводимости натрия было слишком слабым, чтобы поддерживать полноценную возбудимость.)

Рис. 3.

Динамический зажим и возбудимость в ооците Xenopus , инъецированном мРНК Kv1.3. ( A ) Сделав экспериментальную систему, описанную на рис. 2, на шаг дальше, переместив зависимую от напряжения проводимость калия из алгоритма динамического ограничения в биологическую область ( Top ). Это достигается путем инъекции мРНК, которая кодирует потенциал-зависимый калиевый канал Kv1.3 (, средний ). В течение нескольких дней каналы широко экспрессируются в мембране ооцита.m (V) = [0,5,1,6]; см. Results and Discussion для обозначений масштабирования), а также о кинетике и плотности выраженных каналов Kv1.3. ( B ) Максимальная калиевая проводимость, калиевый потенциал Нернста и емкость мембраны оцениваются стандартными процедурами фиксации напряжения. ( Top ) Емкость ячейки оценивается по скачку емкостного тока при мгновенном переключении от -2,66 В / с до +2,66 В / с (в диапазоне от -70 до -110 мВ). ( Нижний ) Протокол хвостового тока ( Вставка ) для определения потенциала Нернста калия на основе изменения направления тока; деполяризации до +40 мВ с последующей гиперполяризацией до разных значений.G¯K было оценено по максимальному току и потенциалу Нернста и подтверждено с использованием данных о хвостовом токе.

Поскольку не существует стандартной модели возбудимости с проводимостью Kv1.3, мы выражаем структурный размер в терминах фактической максимальной проводимости, нормированной на емкость мембраны; таким образом, S = G¯Na / (G¯Na + G¯Kv1.3). Максимальная калиевая проводимость (G¯Kv1.3), потенциал Нернста калия и емкость мембраны оцениваются стандартными процедурами фиксации напряжения (Рис. 3 B и Методы ).Kv1.3 (V) = 1.

Фазовые диаграммы трех различных экспериментов представлены на рис. 4, где плоскости S – K с четко определенными границами, которые отделяют невозбудимые фазы от возбудимых, подтверждают сокращение исходного многомерного пространства параметров Ходжкина – Хаксли до нижнего S –K фазовая диаграмма. Границы, отделяющие невозбудимые фазы от возбудимых в 12 различных экспериментах, суммированы на рис. 4, внизу справа, .

Рис. 4.

Динамическим зажимом построена фазовая диаграмма возбудимости в Kv1.3-инъецированные ооциты. Верхний правый , Верхний левый и Нижний левый демонстрируют фазовые диаграммы трех различных экспериментов, в которых биологическая емкость, утечка и проводимость калия вносятся за счет ооцита, а проводимость натрия и связанная с ней кинетика вычисляются в виде алгоритм динамического зажима. Обратите внимание на плоскости S – K с относительно четко определенными границами, которые отделяют невозбудимые фазы от возбудимых. ( Внизу справа ) Сводка 12 экспериментов, показывающая, что диагональ с положительным наклоном, отделяющая невозбудимые фазы от возбудимых (продемонстрированная на трех других панелях), одинакова во всех экспериментах.С этой целью для каждого эксперимента была построена гистограмма амплитуд ответа. Из 9 889 ответов во всех 12 экспериментах 529 ответов были идентифицированы в пределах промежуточного диапазона [0,2, 0,8] амплитуд ответов (амплитуда пассивного ответа на стимул была определена как ноль). Координаты S – K этих 529 ответов нанесены на график , нижний правый угол , вместе с подобранной прямой линией (S = 0,7 + 0,4K; 99% доверительные интервалы для средних прогнозов). Числовые символы обозначают различные эксперименты.Наклон отдельных линий, подбираемых отдельно для каждого из 12 экспериментов, составляет 0,66, 0,62, 0,62, 0,75, 0,58, 1,01, 0,49, 1,46, 0,67, 1,25, 2,2 и 0,73. Обратите внимание, что эти склоны значительно менее крутые по сравнению с наклоном модели Ходжкина – Хаксли, описанной Ори и др. (4).

Мощность параметризации может быть дополнительно оценена путем наблюдения нескольких экземпляров одной и той же координаты S – K, демонстрируя, что результат достаточно устойчив к фактическому набору параметров, используемых для определения данной координаты (рис.5). Даже тонкие характеристики отклика (например, подпороговая деполяризация постстимулов на крайних правых графиках рис. 5, , нижний ), не учтенные при построении теории (4), хорошо улавливаются координатами S – K.

Рис. 5.

Адекватность S – K параметризации оценивается путем наблюдения нескольких экземпляров одной и той же координаты S – K. Ооцит с инъекцией мРНК Kv1.3 (Cm ооцит = 0,33 мкФ, ооцит GLeak = 0,035 мСм, ооцит G¯Kv1.3 = 0,4 мСм) связан с алгоритмом динамического зажима, в котором натрий, калий и проводимость Ходжкина-Хаксли (Введено G¯Na, введено G¯K и введено GLeak, соответственно) и их связанная кинетика выражается с помощью вычислений.Kv1.3 (V) = 1 и с учетом проводимости калия (G¯Kv1.3 ооцит и G¯K, введенный), значения S и K для каждого экземпляра были рассчитаны и объединены с разрешением 0,02. Для ясности, всего 3000 трасс были подвергнуты понижающей дискретизации в 3 раза, и каждый из выбранных откликов нанесен на график в соответствующей ячейке координат S – K в Top Left . Следы коричневого цвета соответствуют случаям, когда G¯K injected = 0; красные следы соответствуют случаям, когда G¯K injected = [0.40, 0,73]. ( Вверху справа ) Контурная диаграмма средних амплитуд пиков для всех бинированных координат S – K (3000 пиков). ( Bottom ) Примеры нескольких ответов в четырех координатах S – K (стрелки обозначают время стимула; следы сглажены скользящим средним значением 120 мкс). Ответы довольно устойчивы к фактическому набору параметров, используемых для определения данной координаты. Даже тонкие характеристики отклика (например, подпороговая деполяризация после стимула на крайних правых графиках), не учтенные при построении теории, хорошо улавливаются координатами S – K.Обратите внимание, что «звон» в нескольких быстрых и высокоамплитудных всплесках (изображенных серым овалом в Bottom ) обусловлен ограничениями, налагаемыми скоростью процессора реального времени и / или текущего устройства ввода ( Methods ).

За годы, прошедшие с тех пор, как Ходжкин и Хаксли представили свою каноническую модель, физиологи продолжали исследовать сложное поведение потенциалзависимых ионных каналов. В частности, не все скорости перехода зависят от напряжения, а их характерные временные шкалы охватывают широкий диапазон от субмиллисекунд до минут (26–30).Результаты, представленные на рис. 2, 4 и 5 ограничены короткой миллисекундной шкалой времени; следовательно, эффекты, зависящие от медленной активности, обнаружить не удалось. Тем не менее, медленное закрытие канала белком и его влияние на динамику ответа может быть выявлено посредством направленного движения в пределах диаграммы S – K; например, перемещаясь вверх и вниз по пандусу на диаграмме. Кинетика Kv1.3 особенно актуальна в этом контексте, поскольку она включает в себя скорость перехода, зависящую от напряжения и состояния, а также сочетание медленных и быстрых реакций, охватывающих широкий диапазон временных масштабов (22, 24).м (В), параметры динамического зажима натриевой проводимости Ходжкина – Хаксли. Спайки нанесены на диаграмму S – K, построенную для того же ооцита. Каждая кривая отображает реакцию мембраны на кратковременную стимуляцию током выше порогового значения. По мере того, как система движется к возбудимой фазе (рис. 6, слева, , верхний левый угол диаграммы), ооцит отвечает на стимул самодвижущейся деполяризацией, которая становится полностью раскрытым потенциалом действия. В какой-то момент, как и следовало ожидать, структурная возбуждающая сила (S) настолько высока, а кинетическая восстанавливающая сила (K) настолько мала (0.95, 0,42, изображено стрелкой на фиг. 6, справа ), что мембрана не может гиперполяризоваться обратно до потенциала покоя и остается застрявшей в деполяризованном, невозбудимом значении. По возвращении обнаруживается четкий гистерезис, отражающий восстановление Kv1.3 после длительной инактивации. Рис. 6, Справа , Вставки , показывают два повторения одного и того же протокола линейного изменения в другом ооците, демонстрируя обратимость явления гистерезиса. Такой гистерезис не наблюдается в исходной модели Ходжкина – Хаксли и согласуется с сообщениями, относящимися к воздействиям медленного Kv1.м (В)). Спайки нанесены на диаграмму S – K, построенную для того же ооцита. Каждый график отображает реакцию мембраны на кратковременную стимуляцию током выше порогового значения. Когда система движется к фазе возбуждения (верхний левый угол диаграммы), ооцит отвечает на стимул самодвижущейся деполяризацией, которая становится полностью раскрытым потенциалом действия. В какой-то момент, как и следовало ожидать, структурная возбуждающая сила (S) настолько велика, а кинетическая восстанавливающая сила (K) настолько мала ({0.95, 0,42}, показано стрелкой в ​​ справа ), что мембрана не может гиперполяризоваться обратно до потенциала покоя и остается застрявшей в некотором деполяризованном невозбудимом значении. По возвращении обнаруживается явный гистерезис, отражающий восстановление Kv1.3 после длительной инактивации. ( Правый , Вставка ) Два повторения одного и того же протокола линейного изменения в другом ооците, демонстрируя обратимость явления гистерезиса.

Заключительные замечания

Мы живем во времена, отмеченные способностью собирать данные с постоянно растущей скоростью и разрешением.В результате возникает соблазн использовать эти данные для построения численных моделей повышенной размерности, что делает их все более и более биологически реалистичными. Чтобы избежать ошибки приписывания важности каждому измеряемому параметру, эффективная практика объединяет методы, указывающие на функциональные отношения между параметрами (35), и формулирование низкоразмерных фазовых диаграмм. Однако снижение размерности — Via Regia к формальному пониманию — также имеет свою цену. Во многих случаях это однонаправленный путь, по которому измеряемые объекты абстрагируются и сжимаются до такой степени, что теряются явные свойства физиологических данных из абстрактного представления.Следовательно, после построения абстрактной низкоразмерной модели оценка воздействий и последующее включение новых биологических характеристик в низкоразмерную модель становится сложной задачей, если это вообще возможно.

Здесь мы подошли к проблеме, реализовав методологию, которая имеет долгую и успешную историю в физиологии мембран: идентификация системы с использованием управления с обратной связью (т. Мы описываем экспериментально-теоретический гибрид, структуру, обеспечивающую двунаправленное взаимодействие в реальном времени между абстрактным низкоразмерным представлением и реальными биологическими объектами.Это не процедура апостериорной подгонки; скорее, это живой эксперимент, в котором воздействия данного биологического компонента на абстрактное низкоразмерное представление идентифицируются путем реализации схемы замкнутого цикла в реальном времени.

В частности, комбинируя динамический зажим и гетерологичную экспрессию белков ионных каналов в ооцитах Xenopus , мы сконструировали возбудимую систему, состоящую из смеси биологически и вычислительно экспрессируемых компонентов. Эта экспериментальная конфигурация позволила систематизировать выборку пространства параметров Ходжкина – Хаксли.Полученная фазовая диаграмма подтверждает теоретически предложенную диаграмму (4).

Существует спектр однокомпонентных представлений Ходжкина – Хаксли, простирающийся от конкретных и требовательных к вычислительным ресурсам кинетических моделей переходов состояний каналов до абстрактных моделей, которые являются вычислительно эффективными, но менее реалистичными с биофизической точки зрения (10, 11, 36). Фазовая диаграмма S – K расположена между ними, касаясь обоих концов. С одной стороны, его два измерения выражаются в физиологически доступных параметрах, а с другой стороны, эти два измерения тесно связаны с абстрактными моделями, основанными на нелинейных осцилляторах, где S связана с кубическим полиномиальным выражением, которое обеспечивает быструю положительную обратную связь, а K — связана с переменной восстановления, которая вводит медленную отрицательную обратную связь.Таким образом, фазовая диаграмма S – K может служить общей основой для связи различных представлений в этом спектре друг с другом.

Форма фазовой диаграммы S – K, предложенная в работе. 4 и экспериментально построенный в этом отчете предполагает, что поддержание возбудимости среди параметрических вариаций — это низкоразмерный, физиологически приемлемый процесс управления. Более того, мы показываем, что основные ингредиенты для такого контроля, а именно, память и адаптация, проявляются на фазовой диаграмме как естественный результат кинетики медленной инактивации ионных каналов.

Многие теоретические и экспериментальные анализы показывают, что широкий диапазон временных масштабов, участвующих в медленной инактивации, нарезан тонкими слоями до степени, эффективно эквивалентной континууму масштабов, что указывает на обширную сеть конфигураций, внутри которых белок канала может диффундировать, вызывая медленное зависящее от активности стробирование и адаптивные паттерны возбуждения (28, 32, 37–44). Действительно, медленное зависящее от активности стробирование было предложено как средство поддержания и контроля возбудимости мембран.В частности, зависимость кинетики протеина от активности в относительно медленных временных масштабах, обусловленная множеством состояний протеина, была указана как общее автоматическое и локальное средство стабилизации клеточной функции, независимое от синтеза протеина, и действующее в широком диапазоне — минуты и более. — диапазон шкал времени (3, 4, 45, 46). Таким образом, именно потому, что эти ионные каналы не имеют единой фиксированной постоянной времени, закодированной в их молекулярной структуре, а скорее проходят через несколько состояний, клетки имеют встроенный механизм для плавного функционирования в более широком диапазоне схем возбуждения и напряжений.Аналогичный аргумент справедлив в отношении широкого диапазона временных масштабов, обусловленных множеством различных Kv-каналов (25), что также может расширить стабильные рабочие диапазоны. Это частично смягчает проблему управления, с которой сталкиваются ячейки: для правильной работы может не потребоваться идеальное совпадение номеров каналов, которое в противном случае могло бы потребоваться. Если смотреть под другим углом, несколько состояний инактивации канала и восстановления после инактивации обязательно приводят к гистерезису, а временные масштабы этого гистерезиса становятся механизмом памяти (32, 34, 38), так что клетки могут использовать его для отслеживания своей недавней модели. активности и бездействия.Это снова увеличивает временной интервал, в течение которого образцы активности могут влиять на то, как клетка реагирует на физиологические воздействия. Интересно, что мы обычно думаем о самых быстрых мембранных событиях (потенциалах действия), оказывающих незначительное продолжительное воздействие на клетки, в которых они наблюдаются; но рассмотрение только быстрых отклонений напряжения, таких как потенциалы действия, скрывает эффекты более медленной динамики канала, которые влияют на будущие события.

Остается увидеть, насколько подход, описанный здесь, может быть использован для системной идентификации возбудимых мембран, более сложных, чем минимальная однокамерная конфигурация Ходжкина-Хаксли с двумя проводимостью.Конечно, клетки, которые содержат много различных типов ионных каналов, будут демонстрировать диапазон временных масштабов и зависимость от истории (47). Развитие интуитивного понимания того, как данный набор характеристик зажигания зависит от плотности проводимости многих каналов, может потребовать новых видов принципиального уменьшения размерности в дополнение к численному моделированию методом грубой силы.

Методы

Кластеры из ооцитов Xenopus были любезно предоставлены лабораторией Н. Даскаля (Тель-Авивский университет, Тель-Авив, Израиль).Отдельные ооциты отделяли от кластеров с помощью стандартной механической и ферментативной обработки и хранили при температуре от 18 до 20 ° C в течение ночи перед инъекцией мРНК. МРНК получали из векторов, несущих Kv1.3, любезно предоставленных Alomone Labs (Иерусалим). Ооцитам давали возможность экспрессировать введенную мРНК в течение 2-6 дней перед электрофизиологическими экспериментами. Для управления экспериментами использовались двухэлектродная система фиксации напряжения (NPI TURBO TEC-03X) и плата National Instruments (серия NI 625x).Достаточно короткая длительность цикла (40 мкс) была достигнута в среде интерфейса экспериментов в реальном времени (RTXI; www.rtxi.org), реализованной в программном обеспечении CPP. Последовательность эксперимента была следующей: ооцит, расположенный в перфузионной камере, протыкали двумя мягкими электродами из агарозы, подготовленными, как описано в другом месте (14). Раствор бани при непрерывной перфузии состоял из 96 мМ NaCl, 2 мМ KCl, 1 мМ MgCl2, 1 мМ CaCl2, 5 мМ Hepes, pH доведен до 7,5 с помощью 5 М NaOH. Представленные результаты основаны на экспериментах, проведенных при комнатной температуре (с кондиционером ок.22 ° C) на 7 наивных и 13 инъецированных Kv1.3 ооцитах (см. Ссылку 25 для ожидаемого воздействия температуры на кинетику гейтирования). Каждый эксперимент начинался с протокола фиксации напряжения для определения проводимости утечки, емкости мембраны, потенциала Нернста калия и максимальной проводимости струны (в ооцитах, экспрессирующих Kv1.3). Потенциал Нернста калия (-81,5 ± 10,0 мВ) оценивался по изменению направления тока в хвосте при ограничении напряжения. Максимальная проводимость калиевой струны (0,23 ± 0,12 мСм) оценивалась по максимальному току и потенциалу Нернста; в нескольких случаях проводимость также была подтверждена с использованием наклона потенциала Нернста в протоколах тока хвоста (например,г., рис.3 В ). Проводимость утечки в ооцитах с инъекцией Kv1.3 (0,07 ± 0,06 мСм) оценивали по токовым откликам на серию импульсов фиксации гиперполяризующего напряжения 20 мВ, от -90 мВ удерживающего потенциала. Емкость клеток в ооцитах с введенным Kv1,3 (0,30 ± 0,22 мкФ) и наивных (0,21 ± 0,05 мкФ) ооцитах оценивалась по шагу тока при мгновенном переключении между -2,66 и +2,66 В / с (в диапазоне от -70 до — 110 мВ). Следуя протоколу фиксации напряжения, конфигурация системы была переключена в режим динамического фиксации для экранирования плоскости S – K.Была добавлена ​​выраженная в цифровом виде проводимость утечки, чтобы установить мембранный потенциал покоя около -65 мВ; в случае ооцитов, инъецированных Kv1.3, добавленная цифровая утечка была в большинстве случаев на два порядка меньше по сравнению с биологической утечкой, оцененной из вышеупомянутых экспериментов с ограничением напряжения. Фактический мембранный потенциал покоя после активации режима динамического зажима составлял -66 ± 5,4 мВ (в дальнейшем значения эксперимента, описанного на фиг. 5, в котором протокол динамического зажима был другим, были исключены из статистики).Средний дрейф потенциала покоя во время эксперимента с динамическим зажимом составил 1,5 ± 4,2 мВ. Для каждой точки S; K разрешалась фаза релаксации продолжительностью 99 мс перед записью кривой длительностью 22 мс, в пределах которой подавался деполяризующий стимул длительностью 0,5 мс с последующей записью 20 мс. Выше-пороговая амплитуда стимула в ооцитах, инъецированных Kv1.3, варьировала между клетками в диапазоне от 50 до 60 мкА / мкФ (15,7 ± 13,9 мкА), чего было достаточно, чтобы надежно вызвать всплеск в диапазоне высоких S и низких K. После установки амплитуда стимула поддерживалась фиксированной на протяжении всего эксперимента.Скоростные уравнения для выраженных в цифровом виде проводимости использовались Ходжкином и Хаксли (1) или, где указано, скоростными уравнениями Kv1.3 (22, 24).

Три комментария к трудностям, связанным с техническими аспектами применяемого здесь экспериментального подхода, заключаются в следующем: 1) Завершение протокола таким образом, чтобы координаты S – K были должным образом охарактеризованы, влечет за собой процедуры ограничения напряжения для максимальной проводимости, утечки, емкости и поддержания относительно стабильный потенциал покоя при прохождении через плоскость S – K.Таким образом, стабильные электрофизиологические настройки необходимы для типичного эксперимента продолжительностью ок. 30 минут. В наших руках непрерывное плавление среды ванны и использование электродов, покрытых агарозой, способствовали такой стабильности. 2) Еще одна сложность возникает из-за используемого оборудования. Иногда процессора реального времени и / или пределов текущего устройства впрыска было недостаточно, чтобы догнать при высоких значениях S и низких значениях K, что приводило к звону о пике пика. Мы предполагаем, что передовое оборудование может работать лучше.3) Нам не удалось реализовать экспериментальные условия, при которых проводимость натрия была выражена биологически, а проводимость калия выражалась расчетным путем. В наших руках натриевая проводимость слишком слаба, чтобы поддерживать полноценную возбудимость. Более высокое выражение создало бы проблемы как для оценки максимальной проводимости, так и для динамического ограничения быстрого натриевого тока, которые могли бы быть решены путем проведения экспериментов при более низких температурах.

Благодарности

Эта работа частично поддержана исследовательскими грантами Фонда Лейра (E.M. и S.M.), Национальные институты здравоохранения (E.M.) и Израильский научный фонд (S.M.). Авторы благодарят Леонида Оддески, Тамар Галатеано и Яэль Абучацера за техническую поддержку; Группа Натана Даскаля (Тель-Авивский университет) за щедрый запас ооцитов; Alomone Labs (Иерусалим) для каналов, несущих векторы; и Омри Бараку, Эрезу Брауну, Даниэлю Дагану и Микеле Джульяно за полезные комментарии.

Сноски

  • Вклад авторов: E.M. and S.M. спланированное исследование; ЧАС.О., Х.Х. и С.М. проведенное исследование; С.М. проанализированные данные; и E.M. и S.M. написал газету.

  • Рецензенты: AD, Национальный центр научных исследований; и I.S., Еврейский университет.

  • Авторы заявляют об отсутствии конкурирующей заинтересованности.

  • Размещение данных: файлы данных динамических зажимов заархивированы в Mendeley Data (https://data.mendeley.com/datasets/72pv9sfxkw/1).

  • Copyright © 2020 Автор (ы). Опубликовано PNAS.

Временная динамика мышечной, спинномозговой и корковой возбудимости и их связь с кинематикой в ​​течение трех минут постукивания с максимальной скоростью

Первой целью этой работы было описание физиологических изменений возбудимости, которые происходят вдоль корково-мышечной оси во время выполнение простого повторяющегося движения без сопротивления, выполняемого с максимально возможной скоростью. Вторая цель заключалась в том, чтобы определить, могут ли эти модификации объяснить изменения в работе двигателя.

Усталость выражалась быстрым падением максимальной частоты постукиваний в первую минуту выполнения задания, которая была умеренной во вторую минуту и ​​выходила на плато в третьей части задания. Амплитуда R.O.M показала аналогичный профиль, но гораздо более умеренную величину, и изменение не достигло статистической значимости. На всех тестируемых уровнях возбудимость значительно изменялась в зависимости от задачи, но изменения возбудимости объясняли небольшую часть падения скорости постукивания.

Возбудимость тестировалась во время выполнения задачи, а профили постукивания анализировались во временных окнах 2 с. предшествующей стимуляции, что позволяет избежать вычисления нескольких нажатий, нарушенных применением стимуляции. Эта методика традиционно использовалась для изучения утомляемости во время изометрических сокращений 15,16,17 ; однако для повторяющихся движений типичным подходом было начало оценки возбудимости после завершения задачи 9,10 . Мы избегали этого варианта, потому что известно, что ЦНС очень быстро восстанавливается после мышечных сокращений, которые приводят к утомлению 11,12 , а также потому, что тестирование возбудимости в состоянии покоя может оказаться недостаточным для объяснения изменений, происходящих во время выполнения задания.Этот последний пункт подтверждается данными, полученными в настоящем исследовании, и будет обсуждаться позже.

Выполнение футов на максимально возможной скорости очень быстро вызывало усталость. Инструкции, данные испытуемым, заключались в том, чтобы выполнить фута с максимально возможной скоростью в течение 3-минутного задания без требований, связанных с футами ROM, и им было предоставлено словесное поощрение для того, чтобы постучать как можно быстрее. В этих условиях утомляемость четко определялась как уменьшение максимальной скорости постукивания: очень быстрое снижение наблюдалось в первую минуту, более умеренное снижение происходило во вторую минуту, и довольно постоянная скорость футов была достигнута во время третья минута (примерно 60% от максимальной частоты постукивания).Амплитуда ПЗУ фута существенно не изменилась. На этом этапе мы должны учитывать, что во время ритмичного повторяющегося движения существует тесная обратная зависимость между частотой постукивания и амплитудой ROM. Нажатие на максимально возможную частоту приводит к уменьшению амплитуды ПЗУ; следовательно, если бы участники использовали максимальное ПЗУ, их максимальная частота футов была бы намного ниже. В этом случае поведение мышц-сгибателей и разгибателей, вероятно, должно быть различным, как и в случае, если бы движение выполнялось против сопротивления.Это ключевой момент, который необходимо учитывать для правильного понимания объема нашего исследования: конкретная взаимосвязь между частотой вращения и амплитудой ROM наблюдалась главным образом потому, что испытуемые выполняли максимальную скорость футов с очень малой амплитудой ROM (≈25% от амплитуды ROM). максимальная амплитуда ROM испытуемых).

Поведение в профиле футов согласуется с тем, что было обнаружено в предыдущих исследованиях, в которых оценивались аналогичные задачи. Было показано, что постукивание с максимально возможной скоростью в течение 30 с снижает частоту движений примерно на 15–20% 5,10,13,14 , как и в настоящей работе.Временная эволюция ПЗУ футов показала изменения, которые были менее выражены, чем изменения в скорости футов , что согласуется с предыдущими работами, в которых использовались задачи нарезки гораздо меньшей продолжительности 5,13,14 . Как упоминалось ранее, поскольку постукивание с наивысшей скоростью обязательно приведет к уменьшению ПЗУ, усталость, связанная со скоростью постукивания, может не быть аналогичным образом связана с ПЗУ.

Интересно, что изменения возбудимости мышц-сгибателей и разгибателей во время выполнения задания были значительными, несмотря на антагонистические функции этих мышц.Разгибатель работает против силы тяжести, чтобы поднять палец, а сгибатели действуют, чтобы остановить разгибание и выполнить сгибание (рис. 1b показывает, что произвольная ЭМГ-активность FDI очевидна непосредственно перед пиковым разгибанием (эта активность останавливает разгибание) и сразу после него (при сгибании ускоряется)). Эти изменения возбудимости по мере выполнения задания проявлялись на разных уровнях кортико-мышечной оси. Важно отметить, что баллы возбудимости, полученные с помощью CMEP, MEP и MEPc, зависят от уровня разряда мотонейронов (т.е., фоновая активность ЭМГ) во время стимуляции. Фоновая активность ЭМГ неизбежно меняется по мере выполнения задачи, поскольку она является неотъемлемой частью выполнения утомительной задачи. Однако изменение фоновой активности ЭМГ во время стимуляции было небольшим. Примечательно, что вычисление соотношений MEP / CMEP и MEPc / MEP нивелирует этот эффект, но не в случае отношения CMEP / CMAP.

Если сосредоточить внимание на вызванных потенциалах, то влияние на нервно-мышечное распространение было поразительным. Во-первых, они были небольшими по величине, но значительными.Наиболее затронутой мышцей был FDI, для которого CMAP увеличивались на ≈15% за ≈30 с, а затем постепенно уменьшались. В двух других мышцах изменения CMAP со временем также были значительными, но менее выраженными. Во-вторых, это открытие указывает на то, что чтение и интерпретация сигналов, вызванных на спинномозговом или корковом уровнях, обязательно должны учитывать изменения возбудимости на мышечном уровне и, что важно, во время развития утомляемости. Мы рассмотрели этот важный момент, вычислив отношения CMEP / CMAP, MEP / CMEP и MEPc / MEP; анализ исходных значений CMEP, MEP и MEPc не учитывался (хотя их профили показаны в разделах c-e на рис.4–6). В нескольких предыдущих исследованиях аналогичные подходы использовались для оценки нервных выражений мышечной усталости 1,14 .

В отличие от развития CMAP, спинномозговая возбудимость (то есть соотношение CMEP / CMAP) сильно изменилась во время выполнения задачи. Возбудимость спинного мозга в начале выполнения задачи была примерно в 5 раз выше, чем в состоянии покоя, как в конкретном разгибателе указательного пальца ( Extensor indicis ), так и в конкретном сгибателе указательного пальца (первый спинной межкостный сустав , для которого сгибание играет важную роль, когда большой палец фиксируется в отведении 13,24 , как это было в данном исследовании).Возбудимость позвоночника flexor digitorum superficialis модулируется в меньшей степени во время выполнения задания. Примечательно, что эта мышца воздействует не только на указательный палец, но и на другие пальцы. Кроме того, в нашей экспериментальной установке запястье было зафиксировано в разгибании, что может способствовать ингибированию этой мышцы на пресинаптическом и постсинаптическом уровнях в спинном мозге 25 . По этой причине изменение возбудимости, которое происходит в этой мышце во время выполнения задания, а также связь между изменениями возбудимости и профилем футов (как обсуждается ниже) могут сильно отличаться от изменений, которые происходят в других мышцах. две исследуемые мышцы.В FDI и EXT возбудимость спинного мозга значительно изменилась со временем, но в обоих случаях она оставалась намного выше уровня исходной возбудимости, измеренной в состоянии покоя, и отклонение от этих повышенных уровней возбудимости было небольшим.

Корковая возбудимость, измеренная по соотношению MEP / CMEP, значительно изменилась во время выполнения задания в трех мышцах. Примечательно, что величина этого изменения различалась для трех мышц. В двух мышцах, которые действуют конкретно на указательный палец (FDI и EXT), возбудимость увеличивалась в течение 3-минутного задания.В FDS небольшое, но значительное увеличение возбудимости достигало максимума примерно через 90 с, после чего возбудимость медленно снижалась. В свете предыдущей работы, которая показала явное увеличение корковой возбудимости, наши результаты были в некоторой степени неожиданными 9,10 . Однако в некоторых из более ранних отчетов МЭП приобретались после утомительных повторяющихся движений и / или при тестировании МЭП без учета модуляции спинного мозга и мышечной возбудимости во время тестирования 9,10 (в нашей работе и в случае спинного мозга это модуляция оказалась большой).Наш протокол контролирует эти источники предвзятости. Некоторые другие исследования, в которых эти ограничения контролировались, последовательно показали повышенную возбудимость тормозных интернейронов (ГАМК b ) во время утомления футов 5 . Мы специально не тестировали эти цепи в настоящей работе, но текущие результаты показывают, что повышенная возбудимость тормозных ГАМК b -межных нейронов в M1 5,13 , вероятно, компенсируется изменениями возбудимости некоторых других нейронная популяция, как показывают результаты отношения MEP / CMEP.

Мы оценили некоторые из возможных компенсаторных схем, используя TMS с парными импульсами с ISI 2 мс, вероятно, тестируя ингибирование GABA и в M1 26 . Примечательно, что стандартный протокол парных импульсов для тестирования этой формы ингибирования (т.е. использование в качестве кондиционирующего импульса 90% от AMT 27 ) дает очень сильное ингибирование кондиционированных MEP; таким образом, эта методология может препятствовать обнаружению повышенных уровней торможения, вызванного задачей.Чтобы избежать этого, на исходном уровне мы установили индивидуальную интенсивность кондиционирующих импульсов, создавая кондиционированные MEP, меньшие, чем некондиционные, но достаточно большие, чтобы разрешить их модуляцию путем выполнения утомляющей задачи. Однако неожиданно во время выполнения задания воздействие кондиционирующего импульса на MEP было противоположным: он вызвал облегчение M1 во всех тестируемых мышцах. Мы не идентифицировали физиологический механизм, лежащий в основе этого наблюдения, но он может включать изменения возбуждающего / тормозного баланса M1 во время выполнения утомляющей задачи.Параметры, которые мы использовали в покое, были выбраны для оценки внутрикортикального ингибирования ГАМК 26 . Интересно, что внутрикортикальные возбуждающие цепи также могут быть протестированы с использованием аналогичного ISI 28 . Это случай короткого интракортикального облегчения (SICF), когда подпороговый импульс (доставляемый через 1-5 мс после надпорогового импульса) увеличивает размер MEP, эффект, который опосредуется возбуждающими интернейронами M1 29 . У кого-то может возникнуть соблазн предположить, что в нашем эксперименте может работать аналогичный механизм, в котором кондиционирующий импульс приходит в момент, когда задача вызывает измененный баланс возбуждения / торможения.С другой стороны, хотя наши результаты не могут объяснить механизм, лежащий в основе этого наблюдения, очень важным следствием этих результатов является необходимость проверки выражений утомления во время утомления 1,5,13,14 в качестве баланса возбуждения / торможения. в то время сильно отличается от остатка в состоянии покоя 9,12,30 .

Несмотря на описанные выше явные и значительные изменения возбудимости, наше исследование было разработано, чтобы ответить на более важный вопрос: объясняют ли эти изменения возбудимости изменения частоты или амплитуды постукивания? Чтобы ответить на этот вопрос, мы проверили связь между изменениями в профилях постукивания и возбудимостью.В некоторых мышцах и переменных значимыми были только линейные функции. Таким образом, поведение было хорошо объяснено линейной аппроксимацией, поэтому изменение профиля врезки постоянно с изменением возбудимости (например, рис. 7e). В некоторых других мышцах и переменных значимыми были только квадратичные функции (рис. 7d, g). У тех, у кого β 1 положительный и β 2 отрицательный (таблица 4, рис. 7d), это означает, что существует оптимальный уровень возбудимости для поведения, в результате чего уровни возбудимости выше и ниже этого точка в более низкой производительности.Если β 1 отрицательный и β 2 положительный (рис. 7g), существует уровень возбудимости, при котором поведение было наихудшим, а уровни возбудимости выше и ниже давали лучшие результаты. Наконец, в некоторых случаях важны как линейные, так и квадратичные модели. Это означает, что частота постукивания (или амплитуда ROM) всегда увеличивается (или уменьшается) с повышением возбудимости, но это изменение не является постоянным (рис. 7c). В целом результаты ясно показали, что такая зависимость существует, но довольно ограничена.Наши результаты показывают, что очень похожие уровни возбудимости наблюдаются при очень разных скоростях футов (рис. 8). Это обязательно означает, что какой-то механизм, отличный от того, который исследован в этой работе, ответственен за значительную часть снижения частоты постукивания пальцами, наблюдаемого во время этой повторяющейся задачи без сопротивления. Хорошо известно, что периферические механизмы, связанные с мышечной сократимостью, которые не тестировались в этой работе, играют главную роль в утомлении 31 . Это недавно было подтверждено с помощью задачи футов , выполняемой с максимально возможной скоростью, и было показано, что это происходит даже тогда, когда продолжительность задачи была короткой (30 с) 13 ; в этом случае замедление расслабления мышц было очевидным в конце задания при наличии снижения скорости постукивания на ≈15%.Этот механизм кажется гораздо менее актуальным в случае задач изометрического утомления 13 . В настоящей работе мы наблюдали снижение скорости утечки до 40% в конце задания; однако изменения корковой возбудимости (MEP / CMEP) мышцы FDI, которая была параметром с наибольшей объяснительной ценностью, привели к снижению скорости футов только до 13% (обратите внимание, что это примерно 33% от общее снижение частоты).

Наряду с периферийными элементами могут сосуществовать центральные механизмы.На этом этапе следует иметь в виду, что в нашей работе было исследовано важное, но ограниченное количество центральных цепей, потенциально имеющих отношение к утомлению. Другие популяции интернейронов (тормозных или возбуждающих) могут играть роль в развитии утомляемости. Это, по-видимому, относится к ингибирующим ГАМК b интернейронам 5 . Кроме того, во время развития утомления следует учитывать предполагаемую роль других надспинальных структур, участвующих в моторном контроле (кроме M1) 32 .

С другой стороны, наличие центральной адаптации во время утомления может не иметь корреляции в изменениях возбудимости, отражаемых MEP. Например, снижение мышечной силы и центрального толчка к мышце может не соответствовать изменениям в характеристиках MEP 13,16 . Следуя этой линии мысли, центральный механизм утомления во время RRM может быть связан с точной последовательностью активации антагонистических мышц 33 . Однако, что касается кортико-мышечной оси, возбудимость структур, исследованных в нашей работе, по-видимому, имеет ограниченное влияние на неспособность испытуемых поддерживать максимальную частоту постукивания во время повторяющихся движений.

Ограничения исследования

Несколько моментов следует рассматривать как ограничения нашего исследования. Во-первых, размер выборки исследования был небольшим. Четверо из 14 первоначально набранных субъектов предпочли не принимать участие в сеансе CMAP-CMEP из-за дискомфорта, вызванного этими методами. Таким образом, только 10 участников завершили две сессии. Хотя аналогичные размеры выборки использовались в соответствующих исследованиях в области 1,16 , использование более крупных выборок позволило бы более уверенно оценить результаты.Чтобы учесть это ограничение, мы использовали консервативный подход в нашем анализе данных, и уровень значимости был установлен на p <0,01, как было недавно рекомендовано 23 .

Во-вторых, фаза разгибания футов в нашем исследовании была антигравитационной, и мышцы-сгибатели работали в пользу силы тяжести. Поскольку движению не оказывалось сопротивления, а масса указательного пальца мала (гониометр также очень легкий), мы обсуждали наши результаты как полученные при движении без сопротивления, но это правда, что сопротивление разгибателей и сгибателей в наша задача не совсем такая.Это важно, поскольку повторяющиеся движения против более высоких уровней сопротивления могут представлять различную эволюцию мышечной возбудимости и процессы, связанные с производством мышечной силы 34 .

Наконец, во время записи MEP и MEPc мы сосредоточились на кортикальной горячей точке FDI, которая играет главную роль в этой задаче 5,13,14,24 , и с этим горячая точка В точке мы зафиксировали потенциалы в двух других мышцах. Мы приняли этот подход, поскольку кортикальное пространственное распределение нейронов, нацеленных на мышцы рук, перекрывается.Это было показано ранее в различных исследованиях изображений на людях 35,36 и с записями нейронов у обезьян 37 . Таким образом, в нашем исследовании, даже несмотря на то, что мы были в центре внимания прямых иностранных инвестиций, мы ожидали, что большая часть нейронного пула будет стимулировать две другие мышцы, участвующие в цифровых движениях. Фактически, как было замечено в нашей работе (Таблица 1), оценки MEP-RMS для различных мышц представляли аналогичную долю их CMAP-RMS. Это говорит о том, что мы протестировали аналогичную долю от общего пула нейронов в трех мышцах во время ТМС.По этой причине мы считаем, что использование одной точки доступа подходит для наших целей.

Какова роль теста нервной возбудимости в диагностике паралича Белла (идиопатического паралича лицевого нерва) (IFP)?

Автор

Данетт С. Тейлор, DO, MS, FACN Начальник службы неврологии, Госпиталь Генри Форда Вест Блумфилд; Старший невролог отдела здравоохранения Генри Форда; Клинический доцент кафедры неврологии и офтальмологии, Колледж остеопатической медицины Мичиганского государственного университета

Данетт Тейлор, доктор медицинских наук, FACN является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии, Американского колледжа неврологов-остеопатов и психиатров, Американская медицинская ассоциация, Американская остеопатическая ассоциация, Международное общество болезни Паркинсона и двигательных расстройств

Раскрытие: Ничего не говорится.

Соавтор (ы)

Салли Б. Захария, доктор медицины Доцент кафедры неврологии Медицинского колледжа Университета Южной Флориды; Директор отделения неврологии, отделение инсультов, Медицинский центр по делам ветеранов, Бэй Пайнс

Салли Б. Захария, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии, Американской кардиологической ассоциации, Американского общества нейровизуализации

Раскрытие информации: Партнер не получил ни от кого ни за что.

Главный редактор

Селим Бенбадис, доктор медицины Профессор, директор Комплексной программы эпилепсии, отделения неврологии и нейрохирургии, Общая больница Тампы, Медицинский колледж Морсани Университета Южной Флориды

Селим Бенбадис, доктор медицины, является членом следующих медицинских обществ: Американская академия неврологии, Американская академия медицины сна, Американское общество клинической нейрофизиологии, Американское общество эпилепсии, Американская медицинская ассоциация

Раскрытие информации: Служить (d) в качестве директора, должностного лица, партнера, сотрудника, советника, консультанта или попечителя для: Ceribell, Eisai, Greenwich, Growhealthy, LivaNova, Neuropace, SK biopharmaceuticals, Sunovion
Выступать (d) в качестве докладчика или члена бюро докладчиков для: Eisai, Greenwich, LivaNova, Sunovion
Получил исследовательский грант от: Cavion, LivaNova, Greenwich, Sunovion, SK biopharmaceuticals, Takeda, UCB.

Благодарности

Эдвард Бессман, доктор медицины Председатель отделения неотложной медицины, Медицинский центр Джона Хопкинса Бэйвью; Доцент кафедры неотложной медицины, медицинский факультет Университета Джона Хопкинса

Эдвард Бессман, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неотложной медицины, Американского колледжа врачей неотложной помощи и Общества академической неотложной медицины

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Доминик Дорион, доктор медицины, магистр, FRCSC, FACS Заместитель декана и заместитель декана по ресурсам, профессор хирургии, отделение отоларингологии — хирургия головы и шеи, Медицинский факультет Университета Шербрук, Канада

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Томас Р. Хеджес III, доктор медицины Директор нейроофтальмологии Глазного центра Новой Англии; Профессор кафедры неврологии и офтальмологии Медицинского факультета Университета Тафтса

Томас Р. Хеджес III, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Alpha Omega Alpha, Американской академии офтальмологии, Американской медицинской ассоциации и Североамериканского общества нейроофтальмологов

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Дж. Стивен Хафф, доктор медицины Адъюнкт-профессор, неотложная медицина и неврология, отделение неотложной медицины, Центр медицинских наук Университета Вирджинии

Дж. Стивен Хафф, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неотложной медицины, Американской академии неврологии, Американского колледжа врачей неотложной помощи и Общества академической неотложной медицины

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Сюзан Хороми, доктор медицинских наук, , научный сотрудник, отделение боли и нейросенсорных механизмов, Национальный институт стоматологических и черепных исследований, Национальные институты здравоохранения

Сьюзан Хороми, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии, Американского общества боли и Международной ассоциации по изучению боли

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Милинд Дж. Котари, DO профессор и заместитель председателя кафедры неврологии Медицинского колледжа государственного университета Пенсильвании; Персонал-консультант, отделение неврологии, Медицинский центр им. Милтона С. Херши, Университет Пенсильвании,

Milind J Kothari, DO является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии, Американской ассоциации нейромышечной и электродиагностической медицины и Американской неврологической ассоциации

.

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Эндрю Лоутон, доктор медицины Медицинский директор нейроофтальмологической службы, отделение офтальмологии, Баптистский глазной центр, Баптистский медицинский медицинский центр

Эндрю Лоутон, доктор медицины, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии офтальмологии, Медицинского общества Арканзаса и Южной медицинской ассоциации

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Брюс Ло, доктор медицины Медицинский директор, больница общего профиля Сентара Норфолк; Доцент, помощник директора программы, Основной академический факультет, Департамент неотложной медицины, Медицинская школа Восточной Вирджинии

Брюс Ло, доктор медицины, является членом следующих медицинских обществ: Американского колледжа врачей скорой помощи, Ассоциации резидентов скорой медицинской помощи, Медицинского общества Вирджинии, Норфолкской медицинской академии и Общества академической неотложной медицины

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Арлен Д. Мейерс, доктор медицины, магистр делового администрирования Профессор, кафедра отоларингологии — хирургия головы и шеи, Медицинский факультет Университета Колорадо

Арлен Д. Мейерс, доктор медицины, магистр делового администрирования является членом следующих медицинских обществ: Американской академии лицевой пластической и реконструктивной хирургии, Американской академии отоларингологии — хирургии головы и шеи и Американского общества головы и шеи

Раскрытие информации: Гонорар Covidien Corp за консультационные услуги Консультации; US Tobacco Corporation Неограниченный дар Неизвестно; Axis Three Corporation Консультации по вопросам владения долями; Omni Biosciences Консультации по интересам собственности; Членство в Совете по интересам владения Sentegra; Консультации по вопросам владения Syndicom; Oxlo Consulting; Медвой Доля участия Управляющая позиция; Cerescan Imaging Honoraria Consulting; GYRUS ACMI Honoraria Consulting

Ким Моннелл, DO Консультации по неврологии, Отделение медицины, Медицинский центр Бэй Пайнс, штат Вирджиния,

Ким Моннелл, DO, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии и Американской остеопатической ассоциации

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Hampton Roy Sr, MD Доцент кафедры офтальмологии Медицинского университета Арканзаса

Хэмптон Рой-старший, доктор медицины, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии офтальмологии, Американского колледжа хирургов и Панамериканской ассоциации офтальмологов

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Франсиско Талавера, фармацевт, доктор философии Адъюнкт-профессор, Фармацевтический колледж Медицинского центра Университета Небраски; Главный редактор Medscape Drug Reference

Раскрытие информации: Medscape Reference Salary Employment

Флориан П. Томас, MD, MA, PhD, Drmed Директор отделения травм спинного мозга, Медицинский центр по делам ветеранов Сент-Луиса; Директор Центра рассеянного склероза Национального общества рассеянного склероза; Директор Центра передового опыта Ассоциации невропатологов, профессор кафедры неврологии и психиатрии, доцент Института молекулярной вирусологии и кафедры молекулярной микробиологии и иммунологии Медицинской школы Университета Сент-Луиса

Флориан П. Томас, доктор медицины, магистр медицины, доктор философии, Drmed является членом следующих медицинских обществ: Американской академии неврологии, Американской неврологической ассоциации, Американского общества параплегии, Консорциума центров рассеянного склероза и Национального общества рассеянного склероза

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Б. Вишванатха, MBBS, MS, DLO Профессор отоларингологии (ЛОР), руководитель отделения ЛОР III, ЛОР-институт Шри Венкатешвары, больница Виктория, Бангалорский медицинский колледж и научно-исследовательский институт; Экзаменатор PG и UG, Манипальский университет, Индия и Аннамалайский университет, Индия

B Viswanatha, MBBS, MS, DLO является членом следующих медицинских обществ: Ассоциация отоларингологов Индии, Индийская медицинская ассоциация и Индийское общество отологов

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Брайан Р. Юнг, доктор медицины Профессор офтальмологии, Медицинский факультет клиники Майо

Брайан Р. Юнг, доктор медицины, является членом следующих медицинских обществ: Американской медицинской ассоциации, Американского офтальмологического общества и Североамериканского нейроофтальмологического общества

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Craig H Zalvan, MD Директор отделения ларингологии, доцент кафедры оториноларингологии, хирургии головы и шеи, отделение оториноларингологии — хирургия головы и шеи, Практика ЛОР факультета

Крейг Залван, доктор медицинских наук, является членом следующих медицинских обществ: Американской академии отоларингологии — хирургии головы и шеи, Американской бронхоэзофагологической ассоциации, Американского колледжа хирургов, Американской ларингологической ассоциации, Американского ларингологического ринологического и отологического общества, Американской медицинской ассоциации, медицинской ассоциации. Общество штата Нью-Йорк, Медицинское общество округа Нью-Йорк, Триологическое общество и Фонд голоса

Раскрытие: Ничего не нужно раскрывать.

Графическая математическая модель для моделирования возбудимости отдельной сердечной клетки

Возбудимость — это явление, наблюдаемое в различных типах систем, например, в биологических системах. Сердечные клетки и нейроны — хорошо известные примеры возбудимых биологических систем. Возбудимость как важнейшее свойство должно быть включено в математические модели сердечных клеток наряду с другими биологическими свойствами. Возбудимость математических моделей сердечной клетки обычно исследуется на фазовой плоскости (или фазовом пространстве), что неприменимо с помощью простого математического анализа.Кроме того, возможные роли каждого параметра модели в свойстве возбудимости не могут быть исследованы явно и независимо с помощью анализа фазовой плоскости. В этой статье мы представляем новый графический метод проектирования возбудимости отдельной сердечной клетки. Каждый параметр в представленном подходе не только имеет электрофизиологическую интерпретацию, но и его роль в регулировании возбудимости очевидна и может быть подробно проанализирована. Наш подход проще и легче поддается математическому анализу, чем метод фазовой плоскости.Другое преимущество нашего подхода состоит в том, что другая важная особенность потенциала действия сердечных клеток, то есть морфология плато, может быть разработана и регулируется отдельно от свойства возбудимости. Чтобы оценить представленный подход, мы применили его для моделирования возбудимости в хорошо известных сложных электрофизиологических моделях клеток желудочков и предсердий. Результаты показывают, что наша модель может моделировать возбудимость и временную эволюцию фазы плато одновременно.

1. Введение

Математическое моделирование сердечных миоцитов оказывается полезным инструментом для исследования динамики электрического возбуждения и сокращения в сердце [1, 2].Математическое описание клеток было инициировано новаторской работой Ходжкина и Хаксли (модель HH) [3], которые впервые описали количественный анализ ионных токов гигантского аксона кальмара. Десять лет спустя Ноубл разработал математическую модель, основанную на модели HH, чтобы получить представление о динамике потенциала действия клеток Пуркинье (AP) [4].

Позже ионные модели, описывающие потенциал сердечного действия, становились все более сложными и реалистичными [5–7].Однако сложность этих моделей затрудняет определение подмножества параметров, ответственных за наблюдаемое поведение. Поскольку мы ищем подходы, которые поддаются простому математическому анализу, один из способов избежать сложных моделей — это представить простые процедуры и построить упрощенные модели возбудимых сред. В качестве примера простых подходов и моделей можно назвать модель ФитцХью и Нагумо (FHN) [8–10]. FHN предоставляет качественное описание типичных возбудимых сред, а также информацию о влиянии сокращенного набора параметров.Модель Фентона – Кармы (FK) [10] — это широко используемая упрощенная модель сердечного АД, которая имеет три переменных состояния. Параметры модели FK могут быть выбраны для воспроизведения некоторых свойств ионных моделей и экспериментальных данных для различных сердечных клеток [11–13].

В электрофизиологических моделях параметры часто имеют физиологическое значение и поэтому обычно получаются путем подгонки модели к экспериментальным данным [14]. Было опубликовано множество исследований по различным методам настройки моделей для соответствия желаемым характеристикам одиночного AP [15–19].Однако подобранный набор параметров почти наверняка не будет наилучшим из возможных [20–22].

Возбудимость — это основное хорошо известное явление, наблюдаемое в биологических системах, например, клетках и нейронах. Сердечные миоциты состоят из возбудимых клеток, которые могут генерировать и распространять возбуждение. Возбудимость клеток обусловлена ​​электрофизиологическим поведением ионных каналов и токов [23].

На рисунке 1 (а) показана реальная точка доступа желудочковой клетки (VTC) [5], где темная линия представляет собой точку доступа.На этом рисунке мы разделили темную линию на два типа пунктирных и пунктирных линий. В пунктирных линиях мы видим подъемы вверх (деполяризация), удары вниз (реполяризация) и тишина (покой). Взгляд на электрофизиологическую литературу показывает, что пунктирные сегменты AP, показанные на рисунке 1 (a), отражают возбудимость клетки [23–28], что и является целью исследования.

В этом исследовании возбудимая клетка (EXC) определяется как система, которая имеет только одно состояние покоя, и если она нарушается от остальных, в соответствии с малым (подпороговым) или большим (суперпороговым) возмущениями, потребуется два разных траектории возврата в состояние покоя.Другими словами, эта система имеет одну устойчивую точку равновесия, но два режима возврата в эту точку [23, 24]. В этой статье нас интересует напряжение клеточной мембраны как соответствующая переменная состояния EXC. На рисунке 1 (b) показаны характеристики возбудимости EXC в целом, то есть определения и количества, которые вводят данный VTC в качестве EXC. Что касается рисунка 1 (b), это, ,,,, и TE. Здесь обозначает состояние покоя или напряжение покоя, является порогом хода вверх, т.е.е., если приложенный стимул к EXC понижает мембранное напряжение ниже, EXC не будет возбужден, и мембранное напряжение вернется к, и если приложенный стимул локализует мембранное напряжение выше него, EXC будет возбужден. , и напряжение на мембране претерпевает большую эволюцию, переходя к пиковому состоянию,; а затем, после временной эволюции TE (с продолжительностью), он возвращается в состояние покоя,, через. Вот точка, в которой начинается быстрое снижение (ход вниз) мембранного напряжения.

Основная цель данной статьи — представить математический метод моделирования свойства возбудимости одного сердечного VTC. Наш подход в представленном методе является графическим, к тому же каждый параметр модели не только имеет электрофизиологическую интерпретацию, но и его влияние на возбудимость может быть проанализировано независимо.

2. Материалы и методы

На различных панелях рисунка 1 мы схематически суммировали основные моменты и определения нашего метода и модели.Рисунок 1 (a) показывает, как наша математическая структура на рисунке 1 (b) может быть адаптирована к реальному потенциалу действия желудочка (VAP). Видно, что ВАП состоит из пяти фаз [29, 30]. Фаза 4 представляет собой состояние покоя VAP, где значение потенциала клеточной мембраны стабильно,. Фаза 0 или фаза деполяризации является аналогом фазы быстрого хода вверх на рисунке 1 (b), в которой пороговое напряжение возбудимости () должно быть определено экспериментально. В фазе 1 в VAP генерируется всплеск, так что всплеск напряжения можно рассматривать, как показано на рисунке 1 (b).Фаза 2 или фаза плато — важная часть, в которой ВАП обычно переживает медленную реполяризационную временную эволюцию. Очевидно, что мы можем рассматривать фазу 2 как TE на рисунке 1 (b). Фаза 3, которая формально называется фазой реполяризации, на самом деле является быстрой реполяризацией или понижением AP. Как видно на Рисунке 1 (а), его можно рассматривать как граничную точку между фазами 2 и 3, в которой медленная реполяризация переключается на быструю. Математически эту точку можно определить как точку правого пересечения пунктирной и пунктирной линий на рисунке 1 (а), где наклон правой пунктирной линии равен максимальному наклону реполяризации, а пунктирная линия — это линия проведено от касательной к плато.На рисунке 1 (а) длительность потенциала действия (APD) — это временной интервал от начала деполяризации до точки 40%, 50% или 90% реполяризации. Эта характеристика обозначается как APD n ( n = 40, 50 и 90) [31]. На Рисунке 1 (b) можно предположить, что это APD в VAP.

Фазовая плоскость (пространство) — распространенный метод анализа динамики нейронов и других возбудимых клеток [26]. Хотя возбудимость является одним из динамических проявлений клетки, анализ фазового пространства страдает некоторыми ограничениями и трудностями в этом контексте.Для большей ясности абстрактное определение динамики возбудимости клетки на фазовой плоскости показано на рисунке 1 (c) [26]. На рисунке 1 (c) длинная траектория начинается около маленького квадрата, а затем возвращается к маленькой темной точке. Действительно, большая траектория — это AP, а маленькая темная точка — это состояние покоя. Каждая траектория, которая начинается в небольшой окрестности квадрата и вокруг него, покидает его, а затем возвращается в темную точку (покой). Векторные поля в маленьком пунктирном кружке, а также за его пределами имеют важное влияние не только на возбудимость, но также на морфологию и другие свойства генерируемого AP.На эти векторы влияют почти все параметры системы, что затрудняет математический анализ такой системы на фазовой плоскости. В частности, невозможно индивидуально проанализировать влияние параметров на возбудимость и морфологию ПД. Более того, параметры, отвечающие за фазы деполяризации, плато и реполяризации, нельзя регулировать отдельно. На рисунке 1 (c) большая траектория пересекает себя, поэтому может потребоваться анализ системы в более чем двух пространствах состояний, что усложняет математический анализ.

Как мы увидим, наш графический математический подход не только прост и поддается анализу, но и роль каждого параметра в свойствах системы может быть исследована напрямую и почти независимо. Более того, ожидается, что анализ систем с более чем двумя переменными состояния будет простым и понятным.

С точки зрения электрофизиологии ячейку можно рассматривать как конденсатор, который заряжается (или разряжается) различными ионными токами, причем ионные токи генерируются различными механизмами [26].Рисунок 1 (d) схематично иллюстрирует указанный выше факт, где k — количество токов. На этом рисунке показан основной формализм всех моделей VTC на основе Ходжкина – Хаксли [3], а также формализм нашей модели.

2.1. Графический подход и модельные уравнения

Что касается рисунка 1 (d) и общего формализма HH, наше наблюдение с помощью VTC представляет собой напряжение, которое описывается следующим дифференциальным уравнением:

с новой точки зрения разделить их на две электрофизиологические группы: 1-токи, которые можно рассматривать как функции мембранного напряжения, с символической записью для этой группы, и 2-токи, которые можно рассматривать как функции напряжения и времени одновременно, с символическое обозначение.В нашей простой модели мы используем по одному делегату от каждой группы с символами и соответственно. Мы также называем их «и» для простоты. Итак, мы можем написать где означает емкость мембраны и представить два типа ионных токов, иногда называемых быстрым и медленным, соответственно. Явные выражения для этих токов даются:

В уравнении (3) — это проводимость мембраны, зависящая от напряжения, и обозначает постоянное напряжение (в некоторых случаях напряжение Нернста). В уравнении (4) — это зависящая от напряжения и времени (динамическая) проводимость мембраны, а также другое постоянное напряжение (напряжение Нернста).В этом отношении все элементы нашей модели имеют точную электрофизиологическую интерпретацию. Более того, чтобы быть более электрофизиологически реалистичными, мы пишем, где есть постоянная проводимость, и делегируем зависящую от напряжения динамическую переменную стробирования. Следующее уравнение описывает нелинейное дифференциальное уравнение этой стробирующей переменной: где значение установившегося состояния при напряжении рассматривается как сигмовидная функция следующего вида:

Чтобы подготовить большую адаптируемость нашей модели с электрофизиологией VTC, мы разложить, как в котором — постоянная проводимость, а — переменная стробирования, зависящая от напряжения.Мы также рассматриваем сигмовидную функцию для как

Уравнения (2) — (8) представляют собой существенный формализм и структуру нашей электрофизиологической модели VTC с двумя переменными состояниями [1, 3–5, 10, 12, 13].

2.1.1. Графический подход

В простой модели, которая описывается уравнениями (2) — (8), следует оценить десять параметров,, так, чтобы они могли имитировать реальную точку доступа одного VTC. Желательно, чтобы последние три параметра, которые связаны с ТЕ или каким-либо образом, не имели (или меньше) вкладов в воспроизведение возбудимости модели.

Наша цель — настроить модель (уравнения (2) — (8)) с использованием графического алгоритма таким образом, чтобы выполнялись требуемые свойства возбудимости,, и можно было проанализировать влияние каждого параметра на эти свойства. явно.

Чтобы представить наш новый графический подход, мы строим график зависимости и на той же оси на рисунке 2. Что касается уравнения (2), их точки пересечения означают текущий баланс или точки равновесия.

Ток может быть легко рассчитан как функция, т.е.е., против. Согласно уравнению (3), он пересекает ось в двух точках: и где. Интересно, что ток в каждый момент времени () можно представить как линию с наклоном, пересекающим ось в точке. Как мы упоминали выше, возможные точки пересечения двух графиков на каждом из них указывают на точки равновесия системы, т.е.

Что касается приведенного выше обсуждения, по мере увеличения времени, если оно увеличивается, линия вращается по часовой стрелке вокруг своей точки поворота, а если уменьшается, линия вращается против часовой стрелки.Мы видим, что точка поворота (которую мы установим в будущем) является ключевой.

Теперь предположим, что мы скорректировали параметры модели в так, что и имеем три точки пересечения ( A , B и D ), где, и, как показано на рисунке 2. Все эти точки являются равновесными. точек, потому что условие равенства выполняется () на всех из них. Предположим, что модель находится в состоянии покоя, т.е. мы применяем подпороговое возбуждение, которое немного увеличивается (), чтобы в этой ситуации.Из рисунка 2 видно, что; следовательно, что касается уравнения (2), мембранный потенциал будет возвращен в состояние покоя,. Все это означает, что модель не будет возбуждена подпороговым возбуждением.

Иначе, если модель возбуждается суперпороговым стимулом, то увеличивается до так, что. Что касается рисунка 2 и уравнения (2), это приводит к увеличению напряжения. Как следствие, мембранный потенциал будет притягиваться к следующей точке равновесия. Все это означает, что модель будет возбуждена сверхпороговым возбуждением.

Из приведенных выше абзацев видно, что графическая иллюстрация на Рисунке 2 может удовлетворительно продемонстрировать модель уравнений (2) — (8). При таком подходе динамику модели можно легко понять с помощью наглядной иллюстрации.

(1) Алгоритм оценки параметров . Чтобы скорректировать нашу модель (уравнения (2) — (8)) для получения желаемой точки доступа, мы должны решить обратную задачу: с учетом характеристик точки доступа, представленных на рисунках 1 (a) и 1 (b), вычислить параметры модели. .Таким образом, наш подход будет основан на графике, то есть мы будем использовать структуру, показанную на Рисунке 2. Как можно вывести из рисунков 1 (a) –1 (c), динамика AP VTC может быть изучена в двух частях: возбудимость и TE. Поскольку возбудимость является основной темой этой статьи, мы стремимся представить алгоритм так, чтобы можно было анализировать эти две части как можно более независимо. Далее мы покажем, как наш алгоритм и графический подход могут вычислять параметры модели в частях возбудимости и TE независимо друг от друга.(а) Расчет параметров в разделе возбудимости: в этом разделе мембранное напряжение растет от до, через и развивается от до. Визуальный вывод из рисунка 2 таков: поскольку время не играет важной роли в разделе возбудимости, мы можем считать, что все происходит мгновенно. Следовательно, не было активировано на протяжении всего этого раздела и остается на своем значении до стимулированного состояния,. Предполагая для простоты, мы перепишем уравнения (2) и (6) соответственно, поскольку ток в уравнении (10) играет две важные роли.Во-первых, он обеспечивает мгновенную положительную обратную связь и быстрый регенеративный процесс перехода от к. Во-вторых, как мы увидим позже, он противостоит в фазе плато (эволюция от к) и также контролирует декременты. Что касается определения возбудимости, амплитуда должна быть небольшой на интервале до, чтобы подавить подпороговый стимул, и большой на интервале до, чтобы вызвать быстрый регенеративный процесс. Вышеуказанные требуемые свойства для обеспечиваются определением в уравнении (8).Предполагая, что мы можем записать уравнение (12) в треугольнике с углами, и: Мы определяем параметр α как отношение м -затвор в двух различных напряжениях (и) следующим образом: Подставляя уравнение (13) в уравнение ( 3), получаем Используя уравнение (14), мы можем записать Решение алгебраических уравнений (12) и (15) для, получаем (16) означает, что, имея желаемые характеристики, и, для ячейки и выбора, мы можем получить один из параметров модели,. Рассматривая линию в фиксированной точке, мы имеем. Для простоты и без ограничения общности мы можем масштабировать токи так, чтобы Подставляя уравнения (4) и (18) в уравнение (17), мы получаем Следовательно, Записывая текущий баланс в другом состоянии равновесия точка () приводит к. Используя уравнения (15), (18) и (20) в уравнении (21), мы получаем Решение уравнения (22) для дает После некоторых алгебраических манипуляций с уравнением (23) мы получаем уравнение (24) , которое является аналогом уравнения (16): Выполнение уравнений (16) и (24) одновременно приводит к следующему уравнению: Это означает, что определяется другой параметр модели,,.Запись текущего баланса в стабильной фиксированной точке приводит к: следовательно, мы можем рассматривать α как свободный параметр и выбирать его достаточно малым, чтобы удовлетворить. Согласно определению -gate, если, то, что приводит к, поэтому есть надежда, что грубое условие будет выполнено лучше. В этом условии, Путем некоторых алгебраических манипуляций с уравнением (26), мы получаем связь между параметрами -gate: Кроме того, мгновенный процесс на интервале до может быть убедительным, если определить как седловую фиксированную точку во времени.Это означает, что она должна касаться в точке, которая удовлетворяется следующим условием: Подставляя уравнение (27) в уравнение (28), мы получаем Решение уравнения (29) приводит к определению, которое является одним из параметров модели . Поскольку найти явное решение уравнения (29) представляется трудным, мы решаем его графически, вычерчивая левую и правую части уравнения (29) в одних и тех же координатах по сравнению с, а точка поперечного сечения является решением . После этого использование полученного в уравнении (27) приводит к определению.Теперь, имея и, значения -gate можно найти при любом напряжении. Следовательно, можно определить по следующему уравнению: В заключение мы видим, что параметры,,, и могут быть вычислены в разделе возбудимости с использованием характеристик AP данного VTC. (B) Вычисление параметров в TE раздел: согласно предлагаемому нами подходу и формализму TE AP моделируется вращением вокруг своей точки поворота. Это вращение объясняется постепенной активизацией, которая вызывает изменение напряжения во времени от до.Примечательно, что, хотя он рассматривается как одна переменная состояния, на самом деле он может делегировать более одной переменной состояния (мы более подробно обсуждали этот вопрос в разделе обсуждения). Как правило, TE можно рассматривать как процесс реполяризации, как это показано на рисунке 1 (а).

Здесь, в качестве примера, мы показываем, как можно использовать наш графический подход для моделирования секции TE. Мы принимаем за активационный вентиль и выбираем для него произвольное малое значение в состоянии покоя:

Используя уравнение (31), удовлетворяющее уравнению (20), мы можем определить:

Вспоминая наш графический подход, линия должна быть касательной. к графику в, поэтому

Затем, рассматривая уравнения (3) и (4), получаем

Имея два значения в уравнениях (31) и (34), мы можем определить и следующим образом:

Имея Принимая во внимание вышеупомянутые дискуссии о возбудимости и разделах TE, а также учитывая рисунок 2, а также представленные уравнения, мы реализовали численные вычисления нашего графического подхода в Matlab следующим образом.

При первом временном шаге после возбуждения повышается в сторону; это приращение приводит к вращению линии по часовой стрелке, т.е. генерирует и формирует новую фиксированную точку (например, точка d , показанная на рисунке 2). Эта новая фиксированная точка также создает новую. С течением времени генерируются последовательности и, следовательно,. Чтобы удовлетворить TE желаемой AP и вызвать быструю реполяризацию в, последовательность двух сгенерированных фиксированных точек (d, b) должна встречаться друг с другом во времени и по напряжению.Когда это происходит, происходит регенеративный процесс для быстрого восстановления напряжения. Что касается уравнения (6), временной шаг должен быть достаточно малым, чтобы мы могли уловить динамику во время вращения линии. На рисунке 3 обобщен общий алгоритм определения последовательных точек пересечения линии с графиком.

На рисунке 4 проиллюстрированы все этапы и последовательности оценки параметров нашего подхода.

3.Результаты и обсуждение

В этой статье мы рассмотрели динамику AP VTC в двух разделах: возбудимость и TE. Мы представили модель и показали, как можно оценить ее параметры с помощью графического подхода. Наш метод является графическим, математически понятным и в основном основан на алгебре, которая проще, чем подходы к дифференциальным уравнениям и анализу фазовой плоскости [18]. Здесь мы напоминаем, что нашей основной целью было показать, как наш графический подход может моделировать свойство возбудимости AP.Чтобы проверить эту способность эмпирически, мы использовали две сложные электрофизиологические модели, используя OpenCOR [32], который представляет собой среду для электрофизиологического моделирования, и репозиторий CellML [33]. На основе алгоритма, проиллюстрированного на рисунке 4, мы разработали компьютеризированный алгоритм в Matlab (MathWorks, версия 7.10, 2010 г.) для реализации нашего подхода.

В таблице 1 перечислены вычисленные значения параметров предложенной модели для воспроизведения характеристик возбудимости Noble-2001 VTC [34], а на рисунке 5 (а) представлен графический подход для этого случая.Последовательные поперечные метки на рисунке 5 (а) указывают последовательные сечения линии с кривой, а сечения при напряжениях 50, -28, -49 и -92,8 мВ соответствуют, и, соответственно. На рисунке 5 (b) смоделированная AP сравнивается с моделью Noble-2001. В таблице 2 мы провели количественное сравнение характеристик исследуемой и смоделированной моделей.

9069

906

9069

9092.78



Параметры 0,007 0,07 97,89 −92,8 4,96 −38,1 28,8 −29,43 75,5

T

.8 мВ −49 мв −28 мв 50 мв 160 мс

Параметры 49 160 75,43 −0,000064
−92,55 −48,91 −28 49 160

В другом исследовании мы исследовали модель предсердных клеток CRN-1998 [35].Расчетные значения параметров в нашей модели перечислены в таблице 3, а графические результаты показаны на рисунке 6. В таблице 4 сравниваются характеристики возбудимости AP CRN-1998 с характеристиками предлагаемого нами подхода; видно, что наш подход успешно воспроизводит возбудимость как предсердной клетки, так и желудочковой.

9069

906


9069


Параметры 0,0095 0,1 87,0659 −81,19 4,1416 −47,7800 21,3548 −34,2686 135

T

CRN −81.19 мв −56,88 мв −40 мВ 24,49 мв 215,6 мс
Параметры −81,19 −56 −407


9069

Воспроизведенные особенности двух вышеупомянутых исследованных примеров демонстрируют эмпирическую проверку предлагаемого нами графического подхода. Хотя основной целью этой статьи было моделирование возбудимости VTC с использованием предложенного подхода, как мы видели в предыдущем примере, он также может моделировать возбудимость в клетках предсердий; Фактически, наш подход может быть применен к любой возбудимой системе, которая может быть приведена в формализм, показанный на Рисунке 1.

В нашей статье основное внимание было уделено моделированию возбудимости, то есть разделу возбудимости на рисунках 1 (a) и 1 (b), и работа над проблемой TE может стать предметом независимого исследования. Однако мы представляем здесь краткую аргументацию по этой теме в качестве предисловия к будущим исследованиям.

На рисунках 5 (b) и 6 (b), хотя характеристики возбудимости были предоставлены, ТЕ не кажутся удовлетворительными. .

В приведенных выше исследованиях мы рассмотрели динамику первого порядка для, но наш подход является гибким, так что мы можем рассматривать различные профили скорости для.Чтобы быть более ясным, мы можем даже приписать динамику более высокого порядка на рисунке 2, то есть вращение вокруг своей точки поворота может иметь динамику более высокого порядка. На рисунках 7 и 8 мы прояснили эту идею, рассмотрев более сложный профиль скорости вращения линии. На рисунке 7 (a) показана морфология TE VTC, которая согласуется с морфологией, созданной сложной электрофизиологической моделью [5], где на рисунках 7 (b) –7 (d) общая рассматриваемая динамика для проиллюстрированы соответственно.На рисунке 8 (a) мы проделали то же самое для Noble-2001 [34], где все значения параметров такие же, как в таблице 1, за исключением рассмотрения динамики второго порядка для, как показано на рисунках 8 (b) –8 ( г).

Сохранив наш представленный метод в качестве основного каркаса, мы можем расширить его на модели с более чем двумя переменными состояния. Другими словами, мы видим такие термины, как, j ,,… в электрофизиологической литературе [3, 5, 12, 26]. В этих случаях мы можем принять такой термин как единую составную стробирующую переменную со сложной динамикой. , я.е., с течением времени, как на Рисунке 7 (b).

В качестве ограничения нашей работы мы еще не задействовали этап восстановления в нашем подходе, где он влияет на другие свойства AP, такие как альтернативы [28]. В нашем подходе, показанном на рисунке 2, восстановление можно определить с помощью механизма поворота линии после выхода из касания в точке и ее вращения против часовой стрелки к точке D . Это остающийся вопрос, который будет представлен в следующих статьях.

4.Выводы

Математическое моделирование желудочковых клеток очень помогает кардиологическим исследованиям. Исследователи ищут математические подходы и модели, которые просты и поддаются математическому анализу. В этом исследовании мы предложили новый графический подход, который может независимо смоделировать возбудимость и временную эволюцию AP VTC. Этот подход поддается простому математическому анализу, а влияние каждого параметра на возбудимость и ТЕ можно анализировать и исследовать отдельно.Хотя этот подход был исследован в модели с двумя переменными состояния, он может быть применим для моделей более высокого порядка, как это было показано в предыдущем разделе.

Доступность данных

Никакие данные не использовались для поддержки этого исследования.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации этой статьи.

Дополнительные материалы

Визуальное представление нашего графического подхода, рис. 7 (а). На этой анимации показано изменение токов во времени и точки их пересечения. (Дополнительные материалы)

Повышенная возбудимость подкисленных скелетных мышц | Журнал общей физиологии

Чтобы определить, может ли влияние ацидоза на возбудимость мышц при 11 мМ K + (рис. 1) быть связано с изменением G Cl , параметров кабеля от четырех групп мышц при 11 мМ K + (pH 7,4 или 6,8, с или без Cl в буфере).Проникновение волокон от 4-недельных животных с двумя электродами одновременно приводило, однако, к значительной деполяризации, что делало использование больших удерживающих токов, необходимых для поддержания постоянного потенциала покоя. Чтобы избежать этой проблемы, исследование параметров кабеля проводилось на более крупных мышцах взрослых крыс. На рис. 2А показаны типичные ответы мембранного потенциала на гиперполяризационный ток -40 нА, записанные в четырех разных местах в волокне, инкубированном при pH 6,8 в буфере, содержащем Cl .На основе этих записей были рассчитаны отношения ΔV м / I, связанные с межэлектродным расстоянием, как показано на рис. 2B, где показаны измерения отдельных волокон каждой из четырех групп мышц, отражающие среднее значение для каждой группы. В буфере, содержащем Cl , низкий мышечный pH привел к большим отношениям ΔV m / I, чем нормальный pH, что указывает на то, что проводимость мембраны снизилась из-за подкисления. В отличие от этого волокна в буфере, не содержащем Cl , по-видимому, не пострадали от подкисления, что указывает на то, что влияние pH только на проводимость мембраны было связано с изменением G Cl .Для более качественного исследования влияния ацидоза на компонентную проводимость K + и Cl , λ, R в и G m были определены в каждой из четырех групп в соответствии с методиками. Бойда и Мартина (1959). В таблице I показаны рассчитанные значения λ, R в и G m для волокон при 4 мМ K + (нормальный pH с Cl ) и для четырех групп волокон при 11 мМ K +. . Когда pH снизился с 7.От 4 до 6,8 в мышцах, инкубированных в буфере, содержащем Cl при 11 мМ K + , λ значительно увеличился на 18% (P <0,01) и R в на 40% (P <0,01). Следовательно, мышцы, инкубированные в буфере, содержащем Cl , показали снижение проводимости мембраны с 2136 ± 150 мкСм / см 2 при pH 7,4 до 1393 ± 56 мкСм / см 2 при pH 6,8 (P <0,01). В мышцах, инкубированных в буфере без Cl , не было значительных изменений λ или R в с подкислением, что также отражалось небольшим и незначительным изменением G K + с 405 ± 20 мкСм. / см 2 при нормальном pH до 455 ± 30 мкСм / см 2 при низком pH (P <0.16). Основываясь на этих результатах, подкисление с 7,4 до 6,8 за счет увеличения CO 2 с 5 до 24% вызвало снижение G Cl с 1731 ± 151 мкСм / см 2 при нормальном pH до 938 ± 64 мкСм / см 2 при низком pH, соответствующем снижению на 46% (P <0,01).

Чтобы проверить, повлияло ли на измерения G Cl влияние ацидоза на диаметр мышечных волокон, внутриклеточное содержание воды было измерено в каждой из четырех групп мышц взрослых животных при 11 мМ К. + и сравнивается со средним диаметром волокна, рассчитанным на основе измерений параметров кабеля.Поскольку рассчитанный диаметр существенно не отличался между группами (таблица I), можно ожидать, что внутриклеточное содержание воды будет одинаковым во всех группах. В мышцах, инкубированных в буфере, содержащем Cl при pH 7,4, содержание внутриклеточной воды составляло 2,75 ± 0,05 г H 2 O / г сухого веса, что согласуется с ранее опубликованными значениями для взрослых крыс (Cieslar et al. ., 1998). Ни инкубация в буфере, содержащем Cl , при pH 6,8, ни в буфере, не содержащем Cl , при pH 7.4 или 6,8 вызывали любое изменение внутриклеточного содержания воды в мышцах, при этом содержание составляло 2,78 ± 0,02, 2,72 ± 0,01 и 2,79 ± 0,02 г H 2 O / г сухой массы соответственно (P <0,46, n = 3 во всех группах).

Возбудимость мембраны, равновесный потенциал и потенциал действия


Изображение: «Измерение мембранного потенциала» с помощью OpenStax — https://cnx.org/contents/[email protected]:fEI3C8Ot@10/Preface. Лицензия: CC BY 4.0

.


Мембранный потенциал

Изображение: «Рисунок 1.0: Диаграмма, показывающая ионную основу потенциала покоя »от Synaptidude. Лицензия: CC BY 3.0

.

Мембранный потенциал (Вм) — это разность электрических потенциалов между внутренней и внешней частью биологической клетки. Типичное значение мембранного потенциала составляет от + 40 мВ до -70 мВ .

Рисунок 1.0 показывает, что внутренняя часть клетки более негативна, чем внеклеточная среда. Это связано с проницаемостью клеточной мембраны для определенных ионов и количеством этих ионов.

Концентрации определенных ионов во внутриклеточной и внеклеточной среде указаны в таблице ниже:

Старший №

Ион

Внеклеточная концентрация (мМ / л)

Внутриклеточная концентрация (мМ / л)

1

Натрий (Na +)

145

12

2

Калий (K +)

4

120

3

Хлорид (Cl-)

110

15

4

Кальций (Ca + 2)

2.5

0,0001

Таблица 1.0: Концентрация ионов на клеточной мембране.

Изображение: «Рисунок 2.0: Измерение мембранного потенциала» с помощью OpenStax — https://cnx.org/contents/[email protected]:fEI3C8Ot@10/Preface. Лицензия: CC BY 4.0

.

Основным внутриклеточным катионом является калий, а главным внеклеточным катионом является натрий.

Основной анион — хлорид, который в основном внеклеточный.

Следовательно, среда внутри клетки более отрицательная, чем снаружи, потому что внутри клетки больше отрицательных ионов. Это состояние также известно как мембранный потенциал покоя, поскольку отсутствует активный стимул, как показано на Рисунке 1.0.

Мембранный потенциал измеряется с помощью микроэлектрода , , как показано на рисунке 2.0.

Равновесный потенциал

Равновесный потенциал / обратный потенциал — это мембранный потенциал, при котором чистый поток определенных ионов через открытый канал через клеточную мембрану равен нулю.Таким образом, равновесный потенциал на клеточной мембране составляет 0 мВ . Это состояние, в котором химические и электрические силы уравновешены. Он рассчитывается с использованием уравнения Нернста. В нейронах млекопитающих равновесный потенциал Na составляет +60 мВ, а потенциал K составляет -88 мВ.

Мембранный потенциал покоя

Без стимула мембранный потенциал клетки называется мембранным потенциалом покоя.

Изображение: «Рисунок 3.0: Схема потенциала действия». Автор оригинала: пользователь: Chris 73, обновлено: пользователь: Diberri, преобразовано в SVG пользователем: tiZom — собственная работа.Лицензия: CC BY-SA 3.0

.

Во время мембранного потенциала покоя натрий-калиевый насос использует аденозинтрифосфат (АТФ) для перемещения трех ионов натрия из клетки и двух ионов калия в клетку. Это создает негатив внутри клетки. Кроме того, существуют протекающие калиевые каналы, которые позволяют K + диффундировать из клетки. Считается, что клеточная мембрана поляризована на , , как показано на рисунке 3.0.

  • Мембранный потенциал покоя составляет -70 мВ .

Создание потенциала действий

Потенциал действия генерируется при наличии стимула . Нервные окончания стимулируются изменением окружающей среды, что приводит к открытию натриевых каналов . Ионы натрия перемещаются в клетку, и мембрана считается деполяризованной.

Мембранный потенциал изменяется с -70 мВ до +40 мВ .

Важно отметить, что не каждый стимул может генерировать потенциал действия.Величина изменения потенциала, необходимая для создания потенциала действия, известна как пороговый потенциал .

Стимул открывает некоторые каналы с ионами натрия, которые немного уменьшают негативность внутри клетки. Если пороговый потенциал достигнут, все натриевые каналы открываются, и больше ионов натрия перемещается в ячейку.

Созданный потенциал действия движется по всей длине мембраны, пока вся мембрана не станет деполяризованной.

Пример: потенциал действия

Точки, в которых открываются стробированные по напряжению каналы, называются порогом.

Повышение Vm выше порогового значения может вызвать потенциал действия в определенных тканях, таких как нервы.

Реполяризация

Когда создается потенциал действия и клеточная мембрана деполяризуется, натриевые каналы закрываются, а калиевые каналы открываются. Это позволяет ионам калия выходить из ячейки и воссоздавать отрицательность внутри ячейки . Говорят, что клеточная мембрана реполяризована.

Если мембранный потенциал становится более отрицательным, чем мембранный потенциал покоя, это называется гиперполяризацией .В этом состоянии новый потенциал действия не может быть сгенерирован. Поэтому он назвал рефрактерный период или состоянием покоя, как показано на Рисунке 3.0.

Клеточная мембрана сохраняет свое поляризованное состояние за счет натрий-калиевого насоса, который выравнивает ионы. Ионы натрия, которые переместились в клетку во время действия потенциала действия, вытесняются против градиента концентрации. Точно так же ионы калия перемещаются в клетку. Клеточная мембрана восстанавливает потенциал -70 мВ.

Если поступит еще один стимул, мембрана снова будет деполяризована, и будет создан потенциал действия.

Влияние ионных манипуляций на мембранный потенциал

В нормальных физиологических условиях мембранный потенциал остается в относительно постоянном диапазоне . Однако, если существует электролитный дисбаланс , равновесный потенциал, а также мембранный потенциал изменяются.

В случае гипокалиемии , больше ионов калия утекает из клетки в состоянии покоя, что изменяет мембранный потенциал на более отрицательное значение -90 мВ .Точно так же, если возникает гиперкалиемия , меньше ионов калия будет перемещаться из клетки через протекающие калиевые каналы, и потенциал мембраны покоя станет менее отрицательным.

Влияние тока на потенциал мембраны

Направление тока определяет мембранный потенциал. Если имеется отток положительных ионов , клеточная мембрана станет гиперполяризованной . Если имеется приток положительных ионов , клеточная мембрана может стать деполяризованной и генерировать потенциал действия.

Сенсорный нейрон NaV1.7 способствует возбудимости нейрона дорсального рога

ВВЕДЕНИЕ

Проблема боли продолжает расти, и срочно требуются новые методы обезболивания ( 1 ). Генетические исследования человека выявили ряд потенциальных анальгетических мишеней, включая нейротрофины, факторы транскрипции и ионные каналы ( 2 4 ). Натриевый канал Na V 1,7, экспрессируемый в сенсорных нейронах, необходим для восприятия боли у мышей и людей ( 5 ).Na V 1,7 мутации с усилением функции приводят к постоянной боли у людей, в то время как редкие рецессивные мутанты с потерей функции не вызывают боли, но в остальном нормальны, за исключением неспособности обоняния ( 6 ). Предполагается, что Na V 1,7 играет важную роль в создании ноцицептивных всплесков в сенсорных нейронах. Однако у него есть и другие роли в болевых путях. У мышей делеция Na V 1,7 в сенсорных нейронах приводит к усиленной экспрессии опиоидных пептидов и усилению активности опиоидных рецепторов ( 7 , 8 ).Большая часть анальгезии, связанной с потерей функции Na V 1,7 у мышей и людей, может быть отменена с помощью антагониста опиоидов налоксона, в то время как действие антагониста Na V 1,7 значительно усиливается низкими дозами опиоидов или блокаторов энкефалиназы ( 9 , 10 ). Na V 1.7 также играет необычную роль в качестве интегратора синаптического входа в гипоталамус ( 11 ).

Было показано, что аносмия, связанная с потерей Na V 1,7 в обонятельных нейронах, является результатом недостаточного высвобождения глутамата ( 6 ).В соматосенсорных нейронах также наблюдается потеря высвобождения вещества P из сенсорных нейронов с нулевым мутантом Na V 1,7, что указывает на регуляторную роль Na V 1,7 в контроле высвобождения нейромедиатора ( 12 ). Чтобы изучить этот механизм, мы создали меченую эпитопом Na V 1,7 нокаут-мышь, которая демонстрирует совершенно нормальное болевое поведение. Мы использовали эту мышь сначала для идентификации взаимодействующих белков Na V 1.7 с помощью иммунопреципитации и масс-спектрометрии ( 13 ), а затем для изучения экспрессии Na V 1.7 в центральных окончаниях сенсорных нейронов с использованием как иммуноцитохимии (ICC), так и иммуноэлектронной микроскопии (иммуно-ЭМ).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Na

V 1,7 экспрессируется в первичных афферентных постсинаптических окончаниях в дорсальном роге

Иммуногистохимические исследования показали, что тандемная аффинная очистка (TAP), помеченная Na V 1,7, экспрессируется в пластинках I и II и части пластинки III спинного мозга на основе коэкспрессии с веществом P, кислой фосфатазой простаты (PAP) и везикулярным транспортером глутамата 1 (vGLUT1) (рис.1А). Эти данные согласуются с более ранними исследованиями, которые показали коэкспрессию синаптофизина и Na V 1,7 в пластинке II спинного мозга крысы ( 14 ). Однако неожиданно иммуно-ЭМ показала, что TAP-меченный Na V 1.7 присутствует не только в пресинаптических участках центральных окончаний периферических сенсорных нейронов, но также в постсинаптических участках дендритов в нейронах спинного мозга, как это определено ультраструктурными критериями ( Рис. 1Б) ( 15 , 16 ).Количественное определение иммунореактивных частиц показало ассоциацию 60% иммунореактивного Na V 1,7 с постсинаптическими сайтами, где треть иммунных частиц присутствовала на мембранах дендритных валов (рис. 1С). Кроме того, иммунофлуоресцентная конфокальная микроскопия согласуется с открытием, что TAP-меченный Na V 1.7 экспрессируется не только в пресинаптических окончаниях сенсорных афферентов, но также и в постсинаптических окончаниях интернейронов в пластинке II дорсального рога спинного мозга. шнур (рис.S1).

Рис. 1. Распределение Na V 1.7 в спинном роге.

( A ) Распределение TAP-меченного Na V 1,7 в заднем роге детектировали с использованием иммунофлуоресценции с антителом против FLAG (слева). Поперечные срезы спинного мозга (поясничный отдел 5) оценивали с помощью маркеров поверхностного дорсального рога, таких как субстанция P (пластинка I), PAP (пластинка II) и антитела против vGLUT1 (пластинка III и далее) (в центре). Правые панели показывают объединенные левой и средней панели.Результаты показывают, что меченный TAP Na V 1.7 в основном экспрессируется в пластинках I и II и в части пластинки III. Шкала 100 мкм. ( B ) Субклеточную локализацию TAP-меченного Na V 1,7 в дорсальном роге спинного мозга идентифицировали с помощью иммуно-ЭМ методов. Электронные микрофотографии, показывающие иммунную метку для FLAG в дорсальном роге спинного мозга, были обнаружены с использованием методов предварительного внедрения иммунопероксидазы (вверху) и методов иммунного золота (внизу). Используя метод предварительной встраивания иммунопероксидазы, конечный продукт пероксидазной реакции для FLAG в TAP-tag-Na V 1.У 7 мышей было обнаружено заполнение дендритов (Den) и дендритных шипов нейронов спинного мозга, а также в пресинаптических участках, заполняющих терминалы аксонов (at). У мышей WT (вверху справа) конечный продукт пероксидазной реакции для FLAG не был обнаружен в спинном мозге. При использовании метода предварительного встраивания иммунного золота иммунные частицы для FLAG, присутствующие в TAP-меченном Na V 1,7, в основном обнаруживались во внутриклеточных участках (стрелки красного цвета), а также вдоль плазматической мембраны (наконечники стрелок зеленого цвета) в дендритных стержнях ( Den) нейронов спинного мозга.Кроме того, иммунные частицы для FLAG наблюдались вдоль внесинаптической плазматической мембраны (стрелки синего цвета) терминалов аксонов (at). У мышей WT (внизу справа) наблюдалась очень низкая плотность иммунных частиц для FLAG, аналогичная фоновым уровням, прикрепленных к митохондриям в спинном мозге. Масштабные линейки, 500 нм. HRP, пероксидаза хрена. ( C ) Подсчитывали количество иммунных частиц в поверхностном дорсальном роге мышей Na V 1,7 с меткой TAP. Из 1253 иммунных частиц 768 частиц были расположены в постсинаптических сайтах (61%) и 485 частиц были расположены в пресинаптических сайтах (39%).Из 768 постсинаптических частиц 501 частица была расположена во внутриклеточных сайтах (65%), а 267 частиц были расположены вдоль плазматической мембраны (35%). Вдоль 485 пресинаптических частиц 204 частицы были расположены во внутриклеточных сайтах (42%), а 281 частица была расположена вдоль плазматической мембраны (58%).

Сенсорные нейроны являются источником Na

V 1,7 в нейронах дорсального рога

Происходит ли иммунореактивный Na V 1,7 нейрона дорсального рога из транскриптов мРНК спинного мозга? Исследования секвенирования РНК изолированных нейронов идентифицировали некоторые нейроны дорсального рога, которые экспрессируют Na V 1.7 мРНК ( 17 ). Используя чувствительную технику RNAscope, экспрессия мРНК Na V 1.7 in vivo в подмножестве мотонейронов очевидна, но очень мало транскриптов может быть обнаружено в клетках дорсального рога (рис. S2) ( 18 ). Мы проверили происхождение иммунореактивного Na V 1,7 в нейронах дорсального рога с помощью ризотомии афферентных спинномозговых нервов L5 с последующим исследованием TAP-меченного Na V 1,7 с помощью иммуно-ЭМ через 4 недели (рис. 2). Результат показывает, что количество иммунных частиц в области ризотомированного спинного мозга значительно ниже по сравнению с фиктивным контролем L5 (рис.2, А и Б). Общее количество иммунных частиц было уменьшено примерно наполовину как в пресинаптических (аксоны), так и в постсинаптических окончаниях (дендриты) через 4 недели после ризотомии (рис. 2B). По сравнению с контролем, не было обнаружено явных изменений в относительном распределении иммунных частиц в спинном роге ризотомизированных мышей, где примерно 40% остаточных частиц были обнаружены в пресинаптических окончаниях и 60% в постсинаптических терминалах как у мнимых контрольных, так и у ризотомизированных мышей (рис. 2C). ). Остаточная иммунореактивность в ризотомированных нейронах дорсального рога может представлять продукты деградации или белок, происходящий из восходящих или нисходящих первичных афферентов, поступающих в спинной мозг через соседние нетрансектированные корни.Предполагается, что время жизни белка Na V 1.7 составляет около нескольких недель на основании делеции гена Scn9a у взрослых мышей ( 19 ). В совокупности наши данные согласуются с точкой зрения, что афферентные нервы являются источником иммунореактивного Na V 1,7 в спинном роге.

Рис. 2 TAP-меченный Na V 1.7 подавляется в спинном мозге после дорсальной ризотомии.

Через четыре недели после дорсальной ризотомии на правой L5 спинной мозг TAP-tag-Na V 1.Было экстрагировано 7 мышей, и была проведена иммуно-ЭМ с антителом против FLAG и методами предварительного встраивания иммунного золота на срезы, прилегающие к L5. ( A ) Репрезентативные иммуно-ЭМ изображения из фиктивного контроля (Sham Ctrl, слева) и ризотомии (справа). Иммунные частицы для FLAG были обнаружены во внутриклеточных участках (стрелки на красном фоне), плазматической мембране (стрелки на зеленом) в дендритных стержнях (Den) нейронов спинного мозга и вдоль внесинаптической плазматической мембраны (стрелки на синем) окончаний аксонов (at).Масштабные линейки, 200 нм. ( B ) Общее количество иммунных частиц из фиктивных контрольных образцов (серым цветом) и ризотомии (красным) указывает на то, что экспрессия TAP-меченного Na V 1,7 подавляется примерно на 50% как в пресинаптической, так и в постсинаптической фазах. терминалы после 4 недель ризотомии. ( C ) Распределение (%) иммунных частиц как в пресинаптическом, так и в постсинаптическом окончаниях в модели ризотомии. Количество иммунных частиц подсчитывали как с пресинаптического, так и с постсинаптического окончаний.Результат показывает, что нет значительных относительных изменений распределения в модели ризотомии. * P <0,05, тест Стьюдента t .

Электрофизиологические свойства нейронов пластинки II изменяются в первичных афферентных мышах Na

V 1,7 нокаут-мышей

Чтобы изучить любую возможную функциональную значимость переноса каналов, мы исследовали электрофизиологические свойства нейронов пластинки II спинного рога мышей, в которых Na V 1.7 удаляется только в сенсорных нейронах с использованием Cre-рекомбиназы, управляемой промотором адвиллина.Нейроны Lamina II проявляют разные возбуждающие свойства после инъекций соматического тока и могут быть классифицированы в соответствии с их паттерном возбуждения как тонические, импульсные, одиночные спайковые или отложенные ( 20 ). Мы исследовали, существуют ли различия в относительной частоте каждого типа нейронов у мышей дикого типа (WT) и ганглиев дорсального корня (DRG), специфичных для Na V 1.7, нокаутных (KO) мышей. Все четыре типа картины возбуждения наблюдались как у животных WT, так и у животных Na V 1,7 KO, как показано на репрезентативных кривых на рис.3 (А и В). Распространенность нейронов задержки была сходной у мышей WT (12 из 83) и Na V 1,7 KO (6 из 50), но процент тонических нейронов у мышей Na V 1,7 KO был меньше половины, чем у мышей WT ( Na V 1,7 KO = 18% по сравнению с WT = 40%) мышей. Снижение доли тонических нейронов у мышей Na V 1,7 KO было компенсировано преобладанием одиночного спайка (Na V 1,7 KO = 28% по сравнению с WT = 13%; рис. 3, C и D) и, в меньшей степени лопнувшие клетки (42% против 33%; рис.2, В и Г). Различия в популяциях нейронов в Na V 1,7 KO по сравнению с задним рогом WT были статистически значимыми ( P = 0,0018, χ 2 тест). Наши данные предполагают, что нейроны дорсального рога от Na V 1,7 периферических нейронов KO мышей обладают пониженной возбудимостью. Это было подтверждено наблюдением, что максимальное количество всплесков, зарегистрированных в течение 4-секундного максимального импульса тока (достаточного, чтобы вызвать возбуждение на максимальной частоте без инактивации всплесков), было уменьшено ( P = 0.0288, двухвыборочный тест т с поправкой Велча; Рис. 3E), при этом WT производит 51,7 ± 13,2 спайка ( n = 83 нейрона), а Na V 1,7 KO генерирует 21,2 ± 3,8 спайка ( n = 50 нейронов). Мы также продемонстрировали значительное увеличение порога AP у мышей Na V 1,7 KO по сравнению с нейронами WT ( P = 0,0483, двухвыборочный тест t с поправкой Велча; рис. S3D). Поскольку эти события происходят у мышей, где Na V 1.7 удаляется только в сенсорных нейронах, дефицит в нейронах дорсального рога должен быть результатом нехватки транслоцированного Na V 1.7.

Рис. 3 Электрофизиологические свойства нейронов пластинки II изменены у сенсорных нейрон-специфичных мышей Na V 1.7 KO.

Репрезентативные следы четырех основных паттернов возбуждения нейронов пластинки II, записанные из срезов спинного мозга ex vivo от ( A ) WT и ( B ) Na V 1,7 KO мышей. Текущие инъекции не показаны для ясности.Текущие инъекции для показанных записей были следующими: WT tonic = 80 pA, WT single = 200 pA, WT delay = 200 pA, WT burst = 60 pA, KO tonic = 30 pA, KO single = 100 pA, KO delay = 70 pA. , а KO burst = 50 пА. Процент каждой субпопуляции нейронов в пластинке II мышей ( C ) WT ( n = 83 нейрона) и ( D ) Na V 1,7 KO ( n = 50 нейронов). ( E ) Максимальное количество всплесков, вызванных введением тока для каждого нейрона, по сравнению между WT и Na V 1.7 мышей КО. Разница статистически значима (* P = 0,02875, двухвыборочный тест t с поправкой Велча) с WT при 51,7 ± 13,2 спайка ( n = 83 нейрона) и Na V 1,7 KO при 21,2 ± 3,8 спайки ( n = 50 нейронов).

Na

V 1,7 блокатор PF05089771 снижает возбудимость нейронов дорсального рога

Мы расширили этот генетический анализ путем записи нейронов пластинки II у мышей WT, чтобы определить их возбуждающие свойства до и после применения селективного блокатора PF05089771 (далее PF771). Na V 1.7 каналов ( 21 ). Применение блокатора изменило картину возбуждения в меньшинстве клеток (6 из 24; рис. 4A, вверху). Три импульсных нейрона стали одиночными импульсными нейронами, два тонических активирующих нейрона стали импульсными импульсами, а один тонический активирующий нейрон стал одиночным импульсным импульсом в присутствии PF771. Кроме того, в 10 из 24 нейронов реобаза значительно увеличилась после применения PF771 (медиана от 32,5 до 62,5 пА; P = 0,00586, парный знаковый ранговый критерий Вилкоксона; рис.4Б). Соответственно, в тех клетках, в которых PF771 увеличивал реобазу, медиана максимального количества спайков уменьшилась с 26 до 6 ( P = 0,0438, парный знаковый ранговый критерий Вилкоксона). Напротив, в 14 из 24 клеток, в которых реобаза существенно не пострадала (медиана, от 25 до 22,5 pA; P = 0,1; рис. S3B), среднее количество спайков существенно не изменилось (медиана 33,5 и 36,5; P = 0,358, парный знаковый ранговый критерий Вилкоксона; рис. S3C). В нейронах, в которых реобаза была увеличена, порог напряжения также по-разному влиял: в группах клеток, отвечающих на PF771, средний порог напряжения составлял -37.6 мВ в контроле и увеличился до -34 мВ ( P = 0,00805, парный знаковый ранговый критерий Вилкоксона), в то время как он не изменился для не отвечающих клеток (медиана, от -37,4 до -38 мВ; P = 0,286; рис. . S4).

Рис. 4. Влияние специфического блокатора Na V 1,7 PF771 на нейроны пластинки II мышей WT и Na V 1,7 КО.

Были идентифицированы две популяции нейронов WT: нейроны, которые демонстрировали увеличение реобазы, и нейроны, у которых наблюдались незначительные изменения реобазы или их отсутствие в присутствии PF771 (см.рис.S4). ( A ) Типичный WT запускающий импульс нейрон, демонстрирующий влияние PF771 на возбуждение. ( B ) Типичный Na V 1,7 КО нейрон, запускающий импульс, не проявляющий влияния PF771 на возбуждение. Инжекции тока для трасс были следующие: WT burst = 30 pA и Na V 1.7 KO burst = 50 pA. Текущие инъекции были идентичны до и после приема препарата. ( B ) Нейроны WT разделяли на основе изменения реобаз в присутствии PF771. Парные нейроны WT показали увеличение реобазы с PF771 (заштрихованная полоса) по сравнению с контролем (открытая полоса; * P = 0.00586, парный знаковый ранговый тест Вилкоксона) ( C ) Максимальное количество всплесков (при одной и той же текущей инъекции до и после лекарства) было значительно снижено с PF771 по сравнению с контролем ( # P = 0,04383, парный знаковый ранговый тест Вилкоксона ) в нейронах WT, показывающих увеличение только реобаз. ( D ) Порог был значительно увеличен с PF771 по сравнению с контролем (** P = 0,00178, парный знаковый ранговый критерий Вилкоксона) в нейронах WT, показывающих увеличение только реобазы.Не было обнаружено значительных популяционных различий в отношении ответа на PF771, идентифицированных в нейронах дорсального рога мышей Na V 1,7 КО. Не было значительных изменений в ( E ) реобазе, ( F ) количестве спайков или ( G ) пороге Na V 1,7 KO нейронов дорсального рога в присутствии PF771 по сравнению с контролем.

Обратите внимание, что блокировка PF771 при этой концентрации эффективна только после того, как каналы были инактивированы длительной деполяризацией (клетки, которые показали изменение входного сопротивления на 10% или более после этой деполяризации, были исключены из дальнейшего анализа; см. Методы).Поскольку любые каналы Na V 1.7, расположенные на первичных афферентах, не были бы инактивированы и были бы нечувствительны к PF771, наблюдаемые эффекты специфичны для постсинаптического Na V 1.7 на нейронах дорсального рога. Эти данные подтверждают, что функциональные каналы Na V 1,7 экспрессируются на постсинаптической мембране субнабора нейронов пластинки II, и их активация способствует возбудимости нейронов.

Чтобы подтвердить специфичность действия PF771, мы повторили те же эксперименты с Na V 1.7 мышей KO, измеряющих электрофизиологические свойства n = 16 нейронов lamina II. У мышей Na V 1,7 KO не было значительного изменения реобазы (медиана, от 57,5 ​​до 50 пА; P = 0,504), максимального числа спайков (медиана от 3,5 до 2,5; P = 0,181) или порог (от -36,7 до -37,1 мВ; P = 0,514) в присутствии PF771 (рис. 4, от E до G). Это указывает на то, что КО Na V 1,7 в пресинаптических афферентных сенсорных нейронах приводит к постсинаптическому функциональному дефициту в поверхностном дорсальном роге.

ОБСУЖДЕНИЕ

Наши функциональные исследования демонстрируют, что возбудимость, порог и паттерн возбуждения субнабора нейронов дорсального рога могут быть приписаны присутствию первичного афферентного сенсорного нейрона, производного Na V 1.7. Эти данные имеют значение для разработки анальгетиков и помогают объяснить неспособность периферически ограниченных антагонистов Na V 1.7 быть эффективными анальгетиками ( 9 ). Потеря Na V 1,7, помимо воздействия на возбудимость сенсорных нейронов, увеличивает эндогенный опиоидный драйв, ингибирует высвобождение нейромедиаторов и, как мы показали здесь, снижает возбудимость дорсального рога.Относительная важность этих регуляторных шагов при обезболивании с потерей функции Na V 1.7 остается неопределенной. Тем не менее, наши результаты демонстрируют межклеточный транспорт Na V 1.7, функциональную роль канала в реципиентных клетках и паттерн экспрессии Na V 1.7, который отличается от предсказанного транскриптомными исследованиями. Антагонисты Na V 1,7 еще не оказали столь сильного обезболивания, как потеря самого кодирующего гена, вероятно, потому, что для индукции экспрессии опиоидного пептида, по-видимому, требуется полная блокировка каналов ( 7 ).Эти результаты подтверждают мнение, что целенаправленная абляция Scn9a в сенсорных нейронах может быть более продуктивным подходом к обезболиванию, чем разработка низкомолекулярных антагонистов Na V 1.7.

Каков механизм транснейрональной передачи Na V 1,7? Доказательства переноса белка между клетками были получены в иммунной системе (трогоцитоз) ( 22 ), с факторами транскрипции ( 23 ), посредством транс-синаптического переноса и посредством высвобождения экзосом ( 24 ).Транснейрональный перенос синуклеина был связан с нейродегенеративным заболеванием ( 25 ). Недавние исследования также демонстрируют транс-синаптический перенос РНК через зависимый от активности немедленный ранний ретротранспозонный капсид-подобный белок ARC, который связан с синаптической пластичностью, формированием памяти и нервно-психическими заболеваниями ( 26 ). Похоже, что электрические схемы мозга включают не только передачу электрических сигналов, но и передачу РНК и белков в зависимости от активности. Это первый пример периферически кодируемых белков, влияющих на функцию центральной нервной системы.Однако механизм переноса Na V 1,7 еще предстоит установить.

МЕТОДЫ

Животные

Самок и самцов мышей в возрасте от 4 до 8 недель содержали при 12-часовом цикле свет / темнота и давали пищу и воду ad libitum. Мышей с условным Na V 1,7 КО получали путем скрещивания флоксованных (SCN9A) мышей Na V 1,7 с мышами Advillin-Cre ( 27 ). Na V 1,7 Нокаут-мышей TAP получали, как описано ранее ( 13 ).Все эксперименты проводились с одобрения Министерства внутренних дел Великобритании в соответствии с руководящими принципами, установленными личными и проектными лицензиями, а также руководящими принципами Комитета по исследованиям и этическим вопросам IASP (Международной ассоциации по изучению боли).

Иммуноцитохимические исследования

Перфузию и окрашивание проводили, как описано ранее ( 28 ). Вкратце, после глубокой анестезии раствором пентобарбитона натрия (80 мг / кг; Pentoject, 57-33-0, Animal-care) путем внутрибрюшинной инъекции (например,g., 20 мкл / 25 г мыши) животным выполняли транскардиальную перфузию 10 мл гепаринизированного физиологического раствора [0,9% (мас. / об.) NaCl; гепарин (10 Ед / мл), Wockhardt UK Ltd.], а затем 25 мл свежеприготовленного 4% (мас. / об.) параформальдегида в 0,1 М фосфатном буфере (PB; pH 7,4) (содержащем 15% насыщенной пикриновой кислоты и 0,1% глутаральдегид для иммуно-ЭМ). После перфузии спинной мозг удаляли, затем фиксировали в том же фиксирующем растворе при 4 ° C в течение ночи, а затем подвергали криозащите 30% (мас. / Об.) Сахарозой, содержащей 0,02% азида натрия в 0.1 M PB на ночь. Затем срезы нарезали толщиной 60 мкм на вибратоме (VT1000S, Leica), затем инкубировали в 50% этаноле в течение 30 минут, блокировали блокирующим буфером [1 × фосфатно-солевой буфер (PBS), содержащий 0,3% тритона. X-100, содержащий 5% ослиной сыворотки] при комнатной температуре в течение 1 часа, а затем инкубировали в первичных антителах, разведенных в блокирующем буфере, при 4 ° C в течение ночи. После трех промывок в PBS срезы инкубировали со вторичными антителами при комнатной температуре в темноте в течение 2 часов.Позже срезы промывали трижды в PBS, а затем помещали на предметные стекла SuperFrost Plus (Ref J1800AMNZ, Thermo Fisher Scientific), помещали в антифадную монтажную среду (H-1000, Vector Laboratories), покрывали покровным стеклом и запечатывали лаком для ногтей. . Наконец, срезы сканировали с помощью конфокального микроскопа Zeiss LSM 710 204. Первичные антитела: анти-FLAG (1: 100; F1804, Sigma), анти-субстанция P (1: 200; OBT06435, Oxford Biotec), анти-PAP (1: 1000; AAF23171, Aves Lab Inc.), анти- vGLUT1 (1: 5000; AB5905, Chemicon), анти-Гомер (1: 1000; Frontier Institute, AB_2631104) и анти-vGLUT2 (1: 5000; ab2251, Millipore).Вторичные антитела представляют собой ослиные антимышиные A488 (1: 1000; 715-545-150, Jackson ImmunoResearch), ослиные антитела против цыплят (1: 1000; 703-025-155, Jackson ImmunoResearch), ослиные антикрысиные антитела A647 (1 : 1000; 712-605-153, Jackson ImmunoResearch), против ослиных против морских свинок Pacific Blue (1: 1000; 706-475-148, Jackson ImmunoResearch) и ослов против козьих Родамин Ред (1: 1000; 705-025). -003, Jackson ImmunoResearch).

Иммуногистохимия для электронной микроскопии

Иммуногистохимические реакции для электронной микроскопии проводили с использованием методов предварительного внедрения иммунопероксидазы и иммуноголд, описанных ранее ( 15 ).Вкратце, для иммуно-ЭМ использовали 10-недельных TAP-меченых мышей Na V 1.7 ( n = 3) и контрольных мышей из однопометных мышей ( n = 3). После глубокой анестезии поперечные срезы от 4 до 5 поясничного отдела спинного мозга получали, как указано выше (иммунофлуоресценция). Впоследствии свободно плавающие срезы блокировали и инкубировали с моноклональным антителом против FLAG (3,5 мкг / мл; F1804, Sigma) в блокирующем буфере [трис-забуференный физиологический раствор (TBS), содержащий 1% (об. / Об.) Нормальной козьей сыворотки. (NGS)].Их инкубировали с биотинилированным козьим антимышиным иммуноглобулином G (IgG; Vector Laboratories) или с козьим антимышиным IgG, связанным с 1,4 нм золота (Nanoprobes Inc., Стони Брук, Нью-Йорк, США), разведенным в TBS, содержащем 1% NGS. Для иммунопероксидазы срезы затем переносили в смесь авидин-биотинилированную пероксидазу (набор ABC, Vector Laboratories), разбавленную в соотношении 1: 100, в течение 2 часов при комнатной температуре. Активность фермента пероксидазы выявляли с помощью раствора тетрагидрохлорида 3,3′-диаминобензидина (0.05% в ТБ, pH 7,4), к которому было добавлено 0,01% H 2 O 2 . Для иммунозолота срезы были постфиксированы в 1% (об. / Об.) Глутаровым альдегидом и промыты бидистиллированной водой с последующим усилением серебром частиц золота с помощью набора HQ Silver (Nanoprobes Inc.). Затем все срезы обрабатывали тетраоксидом осмия (1% в 0,1 M PB), окрашивали уранилацетатом, дегидратировали в градиентной серии этанола и помещали на предметные стекла в смолу Durcupan (Fluka) на предметных стеклах. Представляющие интерес области были вырезаны при длине волны от 70 до 90 нм на ультрамикротоме (Reichert Ultracut E, Leica, Австрия) и собраны на однослотовых медных сетках, покрытых пиолоформом.Окрашивание проводили на каплях 1% водного раствора уранилацетата, а затем цитратом свинца по Рейнольдсу. Ультраструктурный анализ выполнен на электронном микроскопе JEOL JEM-1010.

Дорсальная ризотомия и иммуно-ЭМ

Процедуру дорсальной ризотомии в области 5 (L5) поясничного ганглия заднего корешка выполняли, как описано ( 29 ). Вкратце, 8-недельных мышей Na V 1,7, меченных TAP, анестезировали 2–3% изофлураном в кислороде (0,5 л / мин), а затем ламинэктомия на L5 спинного мозга сопровождалась односторонним разрезом правой L5 дорсальный корешок (ризотомия).Для фиктивных контролей (Sham Ctrl) были выполнены те же процедуры, что и ризотомия, за исключением пересечения. Через четыре недели после операции мышам перфузировали 4% параформальдегида в PBS, содержащем 0,1% глутарового альдегида (Sigma, G5882). После перфузии спинной мозг удаляли и фиксировали в том же фиксаторе при 4 ° C в течение ночи. Затем ткани помещали в 30% сахарозу в 1 × PBS при 4 ° C на ночь. Спинной мозг был разрезан, и была проведена иммуно-ЭМ, как описано в основном тексте. Для подсчета количества иммунных частиц в пластинках I, II и III правого спинного мозга L5 случайным образом брали 50 изображений под электронным микроскопом из каждого образца.Площадь каждого изображения составляет 15 мкм 2 . Следовательно, общее количество каждого образца будет представлять собой иммунные частицы на поверхности 750 мкм 2 .

Препараты спинного мозга

Препараты спинного мозга получали от самцов или самок мышей в возрасте от 30 до 60 дней либо от WT C57Bl / 6, либо от условного Na V 1,7 KO (Na V 1,7 KO). Животных анестезировали внутрибрюшинной инъекцией смеси кетамин / ксилазин (80 и 10 мг / кг соответственно) и декапитировали.Спинной мозг иссекали в ледяной искусственной спинномозговой жидкости (aCSF) следующего состава: 113 мМ NaCl, 3 мМ KCl, 25 мМ NaHCO 3 , 1 мМ NaH 2 PO 4 , 2 мМ CaCl 2 , 2 мМ MgCl 2 и 11 мМ d-глюкозы, и тот же раствор использовали для последующих электрофизиологических записей. После отделения от позвоночника спинной мозг тщательно очищали от соединительных тканей и отрезали спинные корешки примерно на 2 мм в длину.Затем спинной мозг приклеивали к блоку агара и приклеивали к камере для нарезки вибратома HM 650V (Microm, Thermo Fisher Scientific, Великобритания). Раствор, использованный для нарезки, содержал 130 мМ k-глюконата, 15 мМ KCl, 0,05 мМ EGTA, 20 мМ Hepes, 25 мМ d-глюкозы, 3 мМ кинуреновой кислоты, 2 мМ Na-пирувата, 3 мМ мио-инозитола, 1 мМ Na. -l-аскорбат и pH 7,4 с помощью NaOH ( 30 ). Срезы инкубировали в течение 40 минут при 35 °, а затем давали уравновеситься при комнатной температуре еще на 30 минут перед началом записи.

Электрофизиология

Регистрацию тока и напряжения выполняли с использованием усилителя Molecular Devices Multiclamp 700B (Scientifica, Великобритания) или усилителя ELC-03X (NPI electronic, Германия). Сигналы фильтровали на частоте 5 кГц, регистрировали на частоте 50 кГц с использованием аналого-цифрового преобразователя Molecular Devices 1440A (Scientifica, UK) и записывали с помощью программного обеспечения Clampex 10 (Molecular Devices, Scientifica, UK). Электроды вытягивали съемником Flaming-Brown (P1000, Sutter Instruments, США) из толстого боросиликатного стекла (GC150F, Harvard Apparatus, Великобритания).Сопротивление электродов после полировки наконечника огнем составляло от 3 до 5 МОм. Баланс моста был применен ко всем записям. Внутриклеточный раствор содержал 125 мМ k-глюконат, 6 мМ KCl, 10 мМ Hepes, 0,1 мМ EGTA, 2 мМ Mg-аденозинтрифосфат (АТФ), pH 7,3 с КОН и осмолярность от 290 до 310 мОсм. Клетки были включены для дальнейшего анализа, если их входное сопротивление на протяжении всего эксперимента было стабильным (в пределах 10% от его начального значения) и если их пики (вызванные текущим шагом) превышали 5 мВ.

Клетки были нацелены на внутреннюю и внешнюю пластинки II и визуализированы с помощью микроскопа Eclipse E600FN Nikon (Nikon, Япония), снабженного инфракрасным дифференциальным интерференционным контрастом, подключенного к цифровой камере (Nikon, DS-Qi1Mc). В большинстве экспериментов спинной корешок стимулировали с помощью секционного электрода, подключенного к изолированному стимулятору тока (DS3, Digitimer, UK). Интенсивность стимуляции была зафиксирована на 5-кратном пороге для вызова низкопороговой реакции в записанной ячейке (обычно от 50 до 100 мкА).Ячейки находились в режиме токового зажима, и их сопротивление и емкость измерялись по отклику напряжения на короткий (20 мс) шаг тока (от 10 до 20 пА). Реобаза была определена как минимальный ток, необходимый для возникновения всплеска. Клетки подразделялись на тонические (срабатывающие непрерывно в течение текущего шага), одиночные спайки (срабатывающие только один раз в начале текущего шага), отложенные (срабатывание в течение текущего шага) и взрывные (запускающие более одного спайка в течение текущего шага). начало текущего шага).

PF771 наносили в ванну путем перфузии в концентрации 100 нМ. Было показано, что при выбранной нами концентрации PF771 не оказывает блокирующего действия на Na V 1,7, если каналы не инактивированы ( 21 ). В наших экспериментальных условиях присутствие блокатора никогда не влияло на реакцию на подачу тока. Эффекты лекарственного средства наблюдались только после того, как каналы Na V 1,7 были инактивированы путем выдерживания клетки при деполяризованном потенциале (0 мВ) в течение 30 с.Клетки, которые демонстрировали изменение входного сопротивления на 10% или более после этой деполяризации, были исключены из дальнейшего анализа. Клетки определялись как «реагирующие» на блокатор каналов, если их реобаза увеличивалась по крайней мере на 10% в присутствии PF771. Все препараты были получены от Sigma-Aldrich, если не указано иное.

Анализ данных и статистика

Для электрофизиологических данных кинетические параметры спайков (ширина спайков, высота, порог и максимальная скорость подъема и спуска) были измерены с использованием специально написанного программного обеспечения [набор байесовского квантового анализа, свободно загружаемый по адресу http: // sourceforge.net / projects / pyclamp / ( 31 )]. Все остальные статистические данные и анализ данных выполнялись с помощью программного обеспечения для микроскопии Origin Lab 2018, GraphPad Prism 7.0, Microsoft Excel или Zeiss Zen Blue. Значения выражены как среднее ± SEM. Статистическая значимость данных была проанализирована с использованием критерия Стьюдента t . Значимые различия между двумя группами были исследованы статистически, как указано (* P <0,05, ** P <0,01).

Благодарности: Благодарим Д.Атвеллу и Ф. Вангу за полезную критику и А. Тодду и Дж. Эрдошу за помощь в проведении экспериментов по иммуногистохимии. Финансирование: Мы благодарны за поддержку Wellcome 10154 / Z / 13 / Z и 200183 / Z / 15 / Z и Versus Arthritis. Эта работа была поддержана грантами от Junta de Comunidades de Castilla-La Mancha (PPII-2014-005-P) для R.L. и грантом Совета по медицинским исследованиям (MR / R011494 / 1) для M.A.B. Вклад авторов: Мышь с меткой эпитопа была создана и охарактеризована J.Z. Электрофизиология была проведена M.A.B., S.R.A.A. и F.N. Иммуно-ЭМ была проведена R.L. RNAscope была проведена A.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *